Диета перед дуоденальным зондированием на паразитов: Подготовка к дуоденальному зондированию

Содержание

Диета перед дуоденальным зондированием на паразитов

Очень опасное паразитарное заболевание — описторхоз. Подхватить его рискуют те, кто употребляет в пищу речную рыбу. Каждому необходимо знать, как выявить описторхоз. Для подтверждения этой болезни применяется дуоденальное зондирование: узнайте подробнее о том, что собой представляет это диагностическое исследование. Это процедура, при которой осуществляется забор для анализа секрета из двенадцатиперстной кишки.

Поиск данных по Вашему запросу:

Медицинские справочники:

Истории болезней:

Консультации экспертов:

Дождитесь окончания поиска во всех базах.
По завершению появится ссылка для доступа к найденным материалам.

ПОСМОТРИТЕ ВИДЕО ПО ТЕМЕ: Питание при антипаразитарных программах – Как избавиться от глистов – Глисты лечение

Что такое доуденальное зондирование для выявления паразитов?

Полученные порции содержимого отправляют на бактериологическое и микроскопическое обследование, где специалист может обнаружить очаги воспаления или паразитов. Преимущество зондирования — возможность найти даже вегетативные формы микроорганизмов, которые невозможно увидеть иным способом.

На основании показателей доктор может точно установить диагноз и назначить адекватную терапию. При верной подготовке и внимательному, бережному отношению врача-специалиста процедура пройдет с минимальным дискомфортом и максимальной пользой. Можно ли проводить зондирование ребенку, зависит от его возраста: детям до трех-пяти лет процедура обычно не проводится.

Дуоденальное зондирование — достаточно неприятная для пациента процедура, проведение которой причиняет существенный дискомфорт. Однако отказываться от нее не следует. Чтобы все прошло максимально успешно, пациенту необходимо подготовиться перед обследованием заранее. Для этого нелишним будет консультация лечащего врача, а также сбор необходимой информации об алгоритме проведения забора.

Соблюдение диеты — очень важный фактор, ведь именно он влияет на оценку результатов анализов. Нельзя накануне процедуры голодать, лучше съесть легкий ужин. Чтобы пища не повлияла на результаты анализа, необходимо исключить тяжелые, жирные и газообразующие продукты из рациона. К ним относятся черный хлеб, молоко, картофель, жирное мясо, алкоголь и газированные напитки. Для проведения исследования используют две техники: дуоденальное зондирование классическое и фракционное.

Классический метод называют еще трехфазным и считают несколько устаревшим, так как дуоденальное содержимое отбирают всего в три фазы: из кишки двенадцатиперстной, желчных протоков, пузыря и печени, получая, таким образом, желчь дуоденальную, пузырную и печеночную.

Фракционное дуоденальное зондирование включает пять фаз и содержимое откачивают каждые минут, что дает возможность фиксировать его динамику и тип секреции желчи:. Для проведения классического и фракционного дуоденального зондирования используется резиновый зонд, на конце которого находится пластмассовая или металлическая олива с отверстиями для забора проб. Предпочтительнее использовать двойной зонд, так как один из них откачивает содержимое желудка. При подготовке к дуоденальному зондированию на зонде отмечают расстояние от передних зубов пациента до пупка в положении стоя и ставят три метки, которые дают возможность понять, где находится зонд.

После этого пациента усаживают, кладут ему за корень языка оливу, смазанную глицерином, просят его глубоко дышать и делать глотательные движения. Когда на уровне резцов окажется первая метка, значит, зонд предположительно попал в желудок. Больной ложится на правый бок и продолжает заглатывать зонд.

Делать это полагается до второй метки, обозначающей то, что олива зонда подошла к привратнику и после очередного его раскрытия он сможет попасть в двенадцатиперстную кишку третья метка на резиновой трубке зонда.

Происходит это обычно через один или полтора часа и из зонда начинает поступать золотистая жидкость — порция А, которую собирают в пробирки. Порцию В получают через минут после порции А и она играет наибольшее диагностическое значение. Такая техника дуоденального зондирования дает возможность определить емкость желчного пузыря, особенности отделения желчи, обнаружить органические и функциональные расстройства желчеотделения.

Все полученные в процессе зондирования пробы желчи подвергают микроскопическому и бактериологическому исследованию. Взятое содержимое обязательно проходит бактериологическое и микроскопическое исследование. Также записывается продолжительность каждой фазы.

Увеличение этого периода может свидетельствовать о спазме гладких мышц, а также преграде камне или. Увеличение фазы оттока желчи также может подсказать наличие определенных проблем с функционированием пищеварительной системы. После получения негативных результатов, необходимо пройти и другие виды обследований, например, ультразвуковое. Несмотря на дискомфорт проведения процедуры зондирования, но этот метод до сих пор не утратил актуальности при заборе образцов для исследования.

Дуоденальный зонд — это мягкая и эластичная резиновая трубочка, у которой на конце находится металлическая олива с небольшим отверстием для отсоса содержимого кишечника. На зонде есть три отметки: 45, 70 и 80 см. Они помогают врачу ориентироваться в глубине введения трубки. Длина зонда 1,5 метра, а диаметр составляет 4 мм. По окончании процедуры больной садится на стул, из ротовой полости извлекается зонд. Для полоскания рта дают кипяченую воду или антисептик. Три порции желчи при дуоденальном зондировании исследуются в лаборатории.

К подготовительному этапу нужно отнестись со всей ответственностью, ведь от этого будет зависеть точность результатов. Диета перед дуоденальным зондированием предусматривает отказ от жареного, копченостей, острых и жирных блюд.

Также стоит исключить из рациона все продукты, которые могут вызвать метеоризм. Следует отказаться от картошки, бобовых, лука и чеснока, черного хлеба, капусты.

Питаться нужно будет легкой пищей, которая обогатит организм полезными веществами и поможет вывести шлаки и токсины. Дуоденальное зондирование ребенку проводится так же, как и взрослым, единственное отличие — это то, что малыша нужно подготовить к процедуре психологически и помочь побороть его страх. Получение дуоденального содержимого для лабораторного исследования; изучение динамики желчевыделения.

Заболевания печени, желчного пузыря, желчевыводящих путей. Острый холецистит; обострение хронического холецистита; варикозное расширение вен пищевода; коронарная недостаточность. Техника проведения исследования аналогична технике выполнения дуоденального зондирования.

Фракционное дуоденальное зондирование состоит из пяти фаз или этапов. На первой фазе получают первую порцию желчи из общего желчного протока — прозрачную светло-желтую желчь.

Длится фаза 20 мин. Обычно за это время выделяется 15 — 40 мл желчи. Получение более 45 мл свидетельствует о гиперсекреции или расширении общего желчного протока. Меньшее количество желчи означает гипосекрецию желчи или уменьшение емкости общего желчного протока. В конце первой фазы на зонд накладывают зажим. В начале второй фазы фракционного дуоденального зондирования снимают зажим, опускают свободный конец зонда в баночку и ждут начала поступления желчи. В норме фаза длится 2 — 6 мин.

Удлинение фазы свидетельствует о гипертонусе общего желчного протока или наличии препятствия в нем. Третья фаза — это время до появления пузырной желчи. В норме она длится 2 — 4 мин.

За это время выделяется 3 — 5 мл желчи светло-желтого цвета — остаток желчи из общего желчного протока. Удлинение фазы свидетельствует о повышении тонуса сфинктера. Желчь, получаемая в течение первой и третьей фаз, составляет порцию А классического дуоденального зондирования. Четвертая фаза — это регистрация продолжительности опорожнения желчного пузыря и объема пузырной желчи.

В норме за 30 мин выделяется 30 — 70 мл желчи темно-оливкового цвета — это классическая порция В. Скорость выделения пузырной желчи в течение 10 мин менее этого показателя характерна для гипомоторной функции желчного пузыря, а более — для гипермоторной функции. Пятая фаза дуоденального зондирования — получение печеночной желчи порции С. В норме за 20 мин выделяется 15 — 30 мл желчи золотистого цвета печеночной желчи.

В отделении пациенту должен быть оставлен завтрак постовой медицинской сестре следует заранее сообщить на раздаток номер диеты и количество порций. Желудочное и дуоденальное зондирование проводит персонал, получивший подготовку для работы в зондажном кабинете.

Для забора желчи используется зонд. В качестве стимуляторов применяются раздражители, например, растворы хлорида натрия, сульфата магния, глюкозы, оливковое масло. Возможно внутримышечное введение гистамина. Эта процедура отличается от исследования желудка тем, что зонд продвигается дальше в кишечник. Это позволяет получить выделения из других органов ЖКТ. К тому же, подготовка к желудочному зондированию почти не требуется, а дуоденальное исследование проводится после специальных предварительных мер.

Благодаря исследованию дуоденального содержимого получают данные о внешнесекреторном функционировании поджелудочной железы, желчевыводящих путей, жёлчного пузыря. Процедура помогает выявить воспалительные процессы например, при развитии билиарного панкреатита на фоне желчнокаменной болезни. В числе показаний для дуоденального зондирования выделяют:. Обязательно выявляют перед проведением дуоденального зондирования противопоказания.

Манипуляцию исключают при следующих недугах:. Методика позволяет изучить не только моторику желчного пузыря и желчевыводящих путей, состояние сфинктерного аппарата, но и выявить микроскопические изменения коллоидного состояния желчи.

Подготовка пациента к дуоденальному зондированию проводится следующим образом:. Психологическая подготовка ребенка, беседа врача о необходимости и значимости дуоденального зондирования.

По возможности посещение кабинета зондирования за дня до исследования. Проведения комплекса дыхательных упражнений за дня до исследования, непосредственно перед зондированием и после него раза в день, в течение минут. Тепловые процедуры: вечером накануне исследования — теплая грелка на правый бок ,5 часа с целью улучшения оттока желчи и уменьшения спазма желчевыводящих путей.

Для улучшения пассажа желчи накануне вечером 1 дес. Если у ребенка пищевая непереносимость меда — используют сорбит в дозе 1 чайная л. Легкий ужин накануне зондирования не позднее 18 ч с исключением газообразующих продуктов черный хлеб, цельное молоко, картофель, бобовые и др.

Для уменьшения газообразования и снижения спазмы желчевыводящих путей в течение дней назначают настой цветков ромашки 1 ст.

По показаниям у детей с неустойчивой психикой назначения седативных средств растительного происхождения корень валерианы, трава пустырника, препараты брома за дней до зондирования.

Если целью зондирования является только получение желчи на цитологическое, бактериологическое и биохимическое исследование, то для предупреждения возможных спазмов, затрудняющих проведение зонда, накануне зондирования ребенку назначают антиспастические средства но-шпа, папаверин, галидор и др.

При выраженных клинических проявлениях спазма желудочного пузыря и желчевыводящих путей назначения за дня до исследования в том числе и утром в день исследования используется индуктотермия на область печени, ДДТ на правый диафрагмальный нерв и другие физиопроцедуры. При необходимости получить достоверные сведенья о кинетике желчевыделения этого нельзя, ибо расслабление гладкой мускулатуры с помощью медикаментозных препаратов и физиопроцедур исказит данные о типе дискинезии.

Непосредственно перед зондированием следует прополоскать рот, если имеются зубные протезы — удалить их из ротовой полости, закапать сосудорасширяющие средства нафтизин, галазолин, санорин и очистить носовые ходы.

Для утолщения носового дыхания желательно заблаговременно произвести санацию носоглотки и кариозных зубов.


Про изжогуПодготовка к зондированию на паразитов

Диагностирование описторхоза — инвазионного заболевания, вызываемое печеночным сосальщиком описторхом , довольно затруднительно. Для точного подтверждения диагноза, а также выявления данного гельминта, его яиц и личинок у человека, назначается дуоденальное зондирование, которое помогает получить полную картину состояния желчных путей и степень запущенности недуга. В чем состоит подготовка к дуоденальному зондированию на описторхоз, будет рассказано в этой статье. Зондирование дуоденальное — специальное диагностирование, назначаемое по медицинским показаниям, при котором изучаются образцы желчи с панкреатическим, желудочным и кишечным соком.

Диета подразумевает отказ от «тяжелых» блюд – всего жареного, сладкого, пряного. Поесть последний раз можно примерно за сутки перед дуоденальным зондированием. Пища .

Что можно есть перед зондированием желудка

При исследовании перстной кишки пациента интересует несколько вопросов про дуоденальное зондирование: что такое, как подготовиться к дуоденальному зондированию, что можно кушать перед зондированием. Ответить на них поможет понимание специфики медицинской манипуляции. Правильная подготовка к процедуре позволит получить достоверные результаты о функционировании исследуемого отдела пищеварительного тракта. Для того, чтобы понять, что такое дуоденальное зондирование, необходимо разобраться в специфике метода. Это медицинская манипуляция, представляющая собой диагностику, которая направлена на обследование желчевыводящих путей и печени. В некоторых случаях процедура необходима для опустошения желчного пузыря. Благодаря исследованию дуоденального содержимого получают данные о внешнесекреторном функционировании поджелудочной железы, желчевыводящих путей, жёлчного пузыря. Процедура помогает выявить воспалительные процессы например, при развитии билиарного панкреатита на фоне желчнокаменной болезни. В числе показаний для дуоденального зондирования выделяют:. Обязательно выявляют перед проведением дуоденального зондирования противопоказания.

Подготовка к зондированию на паразитов

Одним из используемых медицинских методов диагностирования паразитов в организме человека является дуоденальное зондирование. Суть анализа заключается во взятии пробы желчи из двенадцатиперстной кишки. Полученный образец состоит из панкреатического, желудочного и кишечного сока, что позволяет обнаружить большое количество заболеваний, проходящих в области пищеварительного тракта. В частности, проводят и дуоденальное зондирование паразитов с целью найти нежелательных червей в брюшной полости. К этой процедуре прибегают достаточно редко, так как обычно для диагностики паразитарных болезней существуют более лояльные методы анализ крови, кала, рентген.

Зондирование дуоденальное — специальное диагностирование, назначаемое по медицинским показаниям, при котором изучаются образцы желчи с панкреатическим, желудочным и кишечным соком.

Рубрика “Паразиты”

Очень опасное паразитарное заболевание — описторхоз. Подхватить его рискуют те, кто употребляет в пищу речную рыбу. Каждому необходимо знать, как выявить описторхоз. Для подтверждения этой болезни применяется дуоденальное зондирование: узнайте подробнее о том, что собой представляет это диагностическое исследование. Это процедура, при которой осуществляется забор для анализа секрета из двенадцатиперстной кишки.

Диета при дуоденальном зондировании

Благодаря исследованию дуоденального содержимого получают данные о внешнесекреторном функционировании поджелудочной железы, желчевыводящих путей, жёлчного пузыря. Для справки! Анализ желчи осуществляется посредством специального зонда, представляющего собой резиновую трубку длиной до 1,5 метра. На конце той части, которая вводится в организм, расположена металлическая деталь с отверстиями. Процедура помогает выявить воспалительные процессы например, при развитии билиарного панкреатита на фоне желчнокаменной болезни. В числе показаний для дуоденального зондирования выделяют:. Обязательно выявляют перед проведением дуоденального зондирования противопоказания.

Дуоденальное зондирование на паразитов: диета и подготовка Подобным дуоденальным зондированием можно получить информацию о состоянии и качестве работы желчных путей. Дополнительно.

Очень опасное паразитарное заболевание — описторхоз. Подхватить его рискуют те, кто употребляет в пищу речную рыбу. Каждому необходимо знать, как выявить описторхоз. Для подтверждения этой болезни применяется дуоденальное зондирование: узнайте подробнее о том, что собой представляет это диагностическое исследование.

В ходе дуоденального зондирования специалист изучает состояние и содержимое двенадцатиперстной кишки, желчного пузыря и печени пациента. Среди показаний к проведению исследования — подозрение или наличие воспалительных процессов в гепатобилиарной системе, паразитарных инфекций. Если вам назначили это непростое обследование, будет полезным узнать подробнее, зачем проводится дуоденальное зондирование, что это такое и как к нему подготовиться. Проведение дуоденального зондирования рекомендуется для диагностики и лечения патологий желчевыводящих путей и печени. Процедура представляет собой стимуляцию выброса выделений из пузыря в двенадцатиперстную кишку. Для забора желчи используется зонд.

При исследовании перстной кишки пациента интересует несколько вопросов про дуоденальное зондирование: что такое, как подготовиться к дуоденальному зондированию, что можно кушать перед зондированием.

Дуоденальное зондирование — современный метод диагностики, который помогает определить состояние печени и желчевыводящих путей. Исследование осуществляется при помощи зонда, который вводят больному в организм через ротовую полость. Данная процедура далеко не самая приятная, так как у обследуемых пациентов часто возникает рвотный рефлекс и чувство тошноты. Для того, чтобы зондирование прошло максимально гладко и достоверно, важно правильно подготовиться к процедуре. Из следующей статьи вы узнаете, как осуществить подготовку к дуоденальному зондированию. Дуоденальное содержимое представляет собой смесь желчи с панкреатическим, желудочным и кишечным соками.

Полученные порции содержимого отправляют на бактериологическое и микроскопическое обследование, где специалист может обнаружить очаги воспаления или паразитов. Преимущество зондирования — возможность найти даже вегетативные формы микроорганизмов, которые невозможно увидеть иным способом. На основании показателей доктор может точно установить диагноз и назначить адекватную терапию.

Диета Перед Зондированием Дуоденальным Меню – Telegraph


➡➡➡ ПОДРОБНЕЕ ЖМИТЕ ЗДЕСЬ!

Диета Перед Зондированием Дуоденальным Меню
Зондирование – это один из основных методов для выявления отклонений в работе желудочно-кишечного тракта. Зондирование желчного пузыря различают слепое и дуоденальное. Суть такой процедуры – это забрать порцию желчи из двенадцатиперстной кишки. Это нужно для взятия с желчи пробы, чтобы можно было провести анализ и назначить нужное лечение. Еще зондирование производят, чтобы вывести застойную желчь с помощью тюбажа или же на выявление некоторых паразитов в кишечном тракте. Однако, важно знать, что и у такого метода есть свои противопоказания и своя специальная подготовка. Перед такой процедурой очень важно соблюдать диетическое питание. Диета перед дуоденальным зондировании — это ряд определенных правил употребления пищи перед процедурой. Соблюдение правил влияет на достоверность результата.
Нельзя проводить процедуру зондирования желчного пузыря, если у больного острый холецистит, гастрит, язва или же другие острые заболевания, при недостатке поступления крови в органы пищеварительного тракта, при инфекциях, при наличии желчных камней, а также в период менструации и беременности. Зондирование – это достаточно серьезно, так что в большинстве случаев его назначает лечащий врач. Если же вы сам решили, что вам нужно провести зондирование, то все же стоит сначала обратится к врачу.
Дуоденальное зондирование проводится только специалистом в больнице, в домашних условиях такую процедуру проводить нельзя, так как она достаточно серьезна для организма и к ней надо готовится. Подготовительный этап заключается в том, чтобы рацион питания и его нормы сводились к приемлемым для того, чтобы зондирование прошло гладко. Подготовка начинается за два или же три дня до зондирования.
Также важно не принимать продукты, которые могут поспособствовать образованию газов в организме. Перед процедурой лучше всего питаться той пищей, которая будет оказывать положительное влияние на органы желудочно-кишечного тракта. Пища богатая на витамины, пища растительного происхождения поможет вашему организму разгрузить себя, таким образом подготовить себя к процедуре. За пару дней до дуоденального зондирования строго запрещается прием медикаментов. Их прием можно будет возобновить уже после проведения зондирования.
Несмотря на то, что лучше всего, что бы перед зондированием пациент принимал в пищу, то к чему он привык, лучше ограничится многими продуктами, отрицательно влияющими на желчную систему. Исключается:
Осторожным нужно быть при употреблении овощей, фруктов и ягод. При употреблении их вместе с растительными маслами выделение желчи сильно усиливается. Поэтому блюда, куда входят овощи, а также употребление фрукт и ягод перед дуоденальным зондированием следует исключить. Желчевыводящая деятельность не должна быть усиленной перед этой процедурой. Она должна находится в своем нормальном состоянии.
Если дуоденальное зондирование делается, чтобы выявить паразитов в желчной системе, то подготовка к такой процедуре может занимать пять суток. Основа подготовки состоит также, как и всегда в исключении любых медикаментов и в соблюдении диеты. Зондирование проходит на голодный желудок, поэтому вечером следует съесть что-то очень легкое и исключить продукты, которые помогают газам образовываться в организме. Принцип диеты при паразитах и перед обычным зондированием практически не отличаются.
Завтрак должен состояться где-то в 8 или 9 часов. Для завтрака лучше всего подойдет какая-нибудь зерновая каша, к ней можно добавить яйцо или же сосиску. Порция каши должна составлять около 200 грамм. Запить это можно несладким чаем. Обед в 14-14:30, советуют на обед съесть мясной бульон с сухариками, рыбой или курицей, или же другим мясным блюдом. Порция бульона – 250 грамм, сухариков – 100, мяса – 80 гр. Ужин в диете перед процедурой проходит в 18 часов, на него лучше всего будет съесть что-то очень легкое. Например, выпить несладкий чай и съесть сухарики (100 грамм). Очень важно в день процедуры зондирования не принимать алкоголь и не курить. Это нарушает процесс работы внутренних органов и зондирование может дать не те результаты.
Еще один пример диеты при подготовке к зондированию заключается в том, чтобы за пару дней перестать есть свеклу, бобовые культуры, морковку, фрукты, молоко, острую еду и яйца. Все эти продукты увеличивают секрецию желчи, как было написано ранее. Вечером, за день до дуоденального зондирования ужинать не позже 7 часов и на ночь выпить чай с медом. Утром перед процедурой ничего не употреблять, не купить и не пить. Максимум допускается несколько глотков воды за час до процедуры. Прием медикаментов – запрещен.
Схожей диеты следует придерживаться и перед операцией, в которой удаляется желчный пузырь. Существуют общие рекомендации употребления пищи.
Копирайт © 2017 Желчный пузырь. Все права защищены.
Тема ColorMag от ThemeGrill. Создано на WordPress.

Диета перед дуоденальным зондировании желчного пузыря
Диета перед дуоденальным зондированием на паразитов
Диета перед зондированием – Паразиты в организме человека
Диета перед дуоденальным зондированием на паразитов
Дуоденальное зондирование на паразитов. Как подготовиться…
Японское Похудение
Диета Номер 5 По Дням
Диета 6 Дней Минус 6
Диета Через 3 Дня
Дюкан Диета 2 Этап

Дуоденальное зондирование – «Какак я первый раз прошла зондирование. Не так страшен черт как его молюют. Советы как облегчить процедуру»

Здравствуйте.

Неделю назад я решилась таки сходить на зондирование, а направили меня на него два года назад после ФГДС (отдельная история).

Изначально на фгдс я оказалась из-за проблем с кожей, где мне и сказали о большом количестве желчи, которая может влиять на кожу. Так как процедуру фгдс я пережила сложно, решила я отложить все на неопределенный срок.

Недавно что-то резко ударило в голову и я решила что пойду.

Итак, далее я расскажу как подготовиться к процедуре, как вообще она проходит и как вести себя во время нее.

 

Подготовка

  1. За сутки до процедуры лучше перейти на более легкую пищу, кушать каши, фрукты, пить воду. За 12 часов до процедуры ничего не есть.
  2. Перед сном выпить сладкий чай и таблеточку ношпы, чтобы желчь шла лучше.
  3. Утром ничего не пить, ни в коем случае не есть, зубы почистить можно.

 

Процедура

Опишу все не медицинским языком.

Сначала я села на стул, открыла рот. Врач мне что-то брызнула в горло, сказала подождать пару минут. У меня образовался “ком в горле”. Наверняка сказать не могу, предполагаю, что это средство ослабляет чувствительность глотки.

Потом она дает специальную ванночку, вы ставите её под подбородок. Дальше она берет тоненькую трубочку, где-то 3-4 мм в диаметре, и тихонечко засовывает вам в горло. Вам нужно сделать глотательное движение, чтобы она прошла сама. Дальше врач медленно просовывает трубочку вам в горло, а вам самое главное дышать. Медленно и вдумчиво и не думать о самой процедуре. У вас начнется рвотный рефлекс, но если вы не кушали и не пили, то, простите, ничего из вам и не выйдет. Будет сильное слюноотделение. Когда трубочка доходит до желудка становится немного хуже. Но вам главное продолжать глубоко дышать.

 

Когда трубка оказалась на своем месте, врач сказала мне немного походить по комнате, подышать. Затем уложила на правый бок, под подбородок подложила ванночку. Подключила к открытой стороне трубочки шприц и подула воздух в желудок, чтобы проверить, что все на месте. Это забавно, совсем не больно. Врач укладывает другой конец трубочки в пробирку. Здесь вам нужно работать прессом, втягивать живот и расслаблять. Это делается для того, чтобы желчь быстрее вытекла. Еще нужно стараться поменьше сглатывать, потому что это создает неприятные ощущения.

 

У меня желчь вылилась около 25 минут. Затем врач заливает в вам раствор магнезии (действует как тюбаж – слепое зондирование, потом нужно не отходить от туалета), но я попросила мне её не заливать, так как нужно было еще на работу. Врач залила мне теплой минералочки через ту же самую трубку. Не очень приятное ощущение, но это уже конец пути. Трубочку я вытянула у раковины сама. В это время врач микроскопировала мою желчь на предмет паразитов.

 

Как итог, хочу сказать, что процедура это не такая страшная, как все оней говорят. Самое сложное пережить первые 2 минуты, пока вам будут сувать трубочку. От процедуры улучшается состояние кожи и улучшается пищеварение.

Сделать дуоденальное зондирование – цены в Новосибирске и Бердске

Дуоденальное зондирование – процедура, применяемая при заболеваниях желчевыводящих путей и желчного пузыря. С ее помощью определяют состав желчи, по ряду признаков судят о возможной задержке ее в желчном пузыре, выявляют микробов и паразитов.

Чтобы сделать дуоденальное зондирование необходимо записаться, заполнив форму на сайте или позвонив по телефону. Потребуется направление от лечащего врача или предварительная консультация нашего гастроэнтеролога. Услуга предоставляется в филиалах в Новосибирске и Бердске.

Показания к проведению дуоденального зондирования

  • горечь во рту,
  • частое ощущение тошноты;
  • боль в подреберье справа или слева;
  • нарушения стула;
  • вздутие живота;
  • угревая сыпь и другие острые хронические кожные заболевания;
  • любые аллергические проявления (сезонные поллинозы, крапивница, риниты, коньюнктивиты и др.).

Данную процедуру применяют не только с диагностической, но и с лечебной целью для промывания желчевыводящих путей при застое желчи, приводящем к ее сгущению. В лечебных целях зондирование проводят 1 раз в 5-7 дней в течение 1,5 месяцев. После 3-4- недельного перерыва курс повторяют.

Оставьте заявку на обратный звонок, мы свяжемся с вами в ближайшее время и проконсультируем по всем вопросам.

Оставить заявку

Противопоказания

  • острый холецистит;
  • желудочные, пищеводные кровотечения;
  • обострение язвенной болезни желудка или 12-перстной кишки;
  • онкопоражения желудка, пищевода.

Подготовка к дуоденальному зондированию

Чтобы исследование дало высокую точность, необходимо строго придерживаться правилам подготовки:

За три дня до исследования

В течение 3 дней перед исследованием нужно соблюдать определенную диету:

  1. нельзя есть овощи, фрукты, черный хлеб, молоко, газированные напитки и другие продукты, которые усиливают газообразование;
  2. Не стоит употреблять жирное, жареное, острое, сладкое, кофе, крепкий чай, алкоголь.
  3. Отменить прием особенно желчегонных.
  4. Рекомендуется в эти дни принимать активированный уголь.

За 12 часов до исследования

Дуоденальное зондирование проводят строго натощак, не ранее, чем через 10-12 часов после последнего приема пищи и жидкости. Перед процедурой запрещено пить жидкости (даже воду), курить. По возможности не принимать лекарственные препараты.

Как проходит исследование

После аэрозольной анестезии корня языка и глотки в положении сидя пациент проглатывает одноразовую трубку диаметром 3,5 мм и длиной около 1,5 м, на конце которой располагается зонд для проникновения в него желчи и содержимого кишки. После проглатывания пациент располагается на кушетке на правом боку.

Процедура может занимать от 30 минут до 2 часов в зависимости от подготовленности пациента.

Стандартно в процессе диагностического дуоденального зондирования у пациента берут для исследования четыре вида (фракции полученных биологических жидкостей):

  • содержимое из двенадцатиперстной кишки
  • желчь из общего желчного протока
  • желчь из желчного пузыря
  • желчь из печеночных протоков

Диагностика паразитов

Среди всех паразитарных болезней, гельминты, населяющие желудочно-кишечный тракт, распространены шире всего. Проблема диагностики этих заболеваний с одной стороны связана с тем, что у паразитозов мало или совсем отсутствуют специфические симптомы (чаще всего они проявляются как наиболее распространенные проблемы органов пищеварения — гастродуоденит, холецистит, синдром раздраженной кишки). С другой стороны, многие из таких заболеваний могут довольно длительное время протекать бессимптомно.

Наиболее достоверным и самым информативным методом диагностики является непосредственное выявление самих паразитов, их яиц и личинок в фекалиях, дуоденальном содержимом, желчи. Для того, чтоб повысить выявляемость можно использовать неоднократный забор материала (т.е. необходимо несколько раз с определенным интервалом сдавать анализ кала), либо применять лабораторные методики обогащения кала (обработка специальным реактивом, центрифугирование и использование фильтров). Для того, чтобы анализ был достоверным, кал после самопроизвольной дефекации нужно собрать в одноразовый контейнер, без примесей влагалищного содержимого и мочи и хранить в холодильнике вплоть до отправки в лабораторию. Для забора дуоденального содержимого и желчи используют метод дуоденального зондирования.

Суть методики заключается в поэтапном заборе 3х порций желчи — дуоденальной, пузырной и печеночной. Для забора желчи пациент глотает дуоденальный зонд, после попадания зонда в тонкий кишечник через него вводится стимулятор — сульфат магния и начинается процесс желчеотведения. Желчь собирается в пробирки и направляется в лабораторию для микроскопирования, в некоторых лабораториях для повышения выявляемости желчь дополнительно центрифугируют. Данная процедура безболезненна и не требует особой подготовки, кроме диеты (накануне не рекомендовано употреблять газообразующие продукты) и приема спазмолитиков за 1−2- дня до ее проведения.

Перед процедурой необходимо пройти УЗИ органов брюшной полости, для исключения желчнокаменной болезни и острого холецистита (противопоказания к зондированию!). Иммунологические методы диагностики (исследование антител, т. е. клеток иммунной системы, вырабатываемых в ответ на паразитов) используется в качестве дополнения к паразитологическому методу, он не обладает 100% чувствительностью и специфичностью.

Будьте здоровы!

Записаться на прием к гастроэнтерологу

Врач гастроэнтеролог — Бахова Анастасия Анатольевна

Записаться можно по телефону (391) 205−00−48 или через личный кабинет

Клиника “Асмедэк” | Дуоденальное зондирование

Дуоденальное зондирование.

Дуоденальное зондирование — это вид исследования, который проводится в диагностических и лечебных целях. В результате выполнения манипуляции дуоденального зондирования специалист получает содержимое из желчного пузыря и двенадцатиперстной кишки. Полученный материал доставляется в лабораторию для исследований: на структуру, состав, наличие паразитов и патологий ЖКТ.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

При процедуре дуоденального зондирования появляется возможность:

  1. Выяснить, как функционирует система желчеотделения у конкретного пациента.
  2. Определить состав желчного пузыря.
  3. Обнаружить наличие функциональных нарушений на ранней стадии.


 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Помимо диагностических целей дуоденальное зондирование применяется как лечебная процедура.

Дуоденальное зондирование применяется при функциональном расстройстве желчевыводящей системы, а именно, в замедлении и ослаблении сократительной способности желчного пузыря, приводящего к застою, сгущению и сладжированию желчи в желчном пузыре, с формированием в последующем желчекаменной болезни.

Лечебная процедура дуоденального зондирования способствует усилению сокращения желчного пузыря с опорожнением застойной желчи с патологическими осадками. 

При периодических процедурах дуоденального зондирования качественно восстанавливается работа желчевыводящей системы, работы кишечника и пищеварительных процессов.

Показания к дуоденальному зондированию

Основные показания для проведения процедуры дуоденального зондирования желчного пузыря является появление следующих симптомов:

  • горечь и гнилостный запах в ротовой полости ;
  • расстройства ЖКТ, чередующиеся запоры и диарея, метеоризмы, вздутие живота;
  • часто возникающая тошнота;
  • боли в правом подреберье;
  • застой желчи;
  • высокая концентрация мочи;
  • подозрение на наличие гельминтов (требуется зондирование на паразитов).


 

 

 

 

 

 

 

 

 

Противопоказания

Как и у многих процедур и манипуляций, дуоденальное зондирование имеет ряд противопоказаний, при которых его проводить нельзя. Все противопоказания определяются, и доводятся до пациента, врачом перед направлением на вышеуказанную процедуру, как и о возможных осложнениях, которые могут возникнуть при проведении Дуоденального зондирования.

Предварительные обследования и подготовка к «Дуоденальному зондированию».

Перед прохождением процедуры необходимо пройти ряд обследований:

— УЗИ органов брюшной полости, (печень, желчный пузырь, поджелудочная железа, селезенка).

— ЭГДС, (эзофагогастродуденоскопия).

— ЭКГ – после 40 лет ОБЯЗАТЕЛЬНО!

Подготовка к процедуре:

Перед прохождением процедуры, при отсутствии противопоказаний, необходимо принимать Одестон 200 мг (1т) х 3 раза в день за 30 минут до еды, 2 – 3 дня.

За 2 – 3 дня до процедуры необходимо соблюдать диету. Исключить продукты питания, которые способствуют повышенному газообразованию.

За 12 часов до процедуры необходимо полностью отказаться от приема пищи, так как дуоденальное зондирование проводится натощак.

Вечером, накануне прохождения процедуры, принять 1 таблетку «Но-Шпа» перед сном.

 

 

Процедуру Дуоденального зондирования можно пройти в клинике «Асмедэк» с понедельника по пятницу с 8:00.

Записаться, и получить информацию, можно по телефонам: +7 771 394 13 54, +7-771-404-0124,  910-166

 

Гастроэнтерология

В последние 10-15 лет  человечество столкнулось с новыми проблемами:  хронические стрессы, некачественные продукты, нерегулярное питание, ранний докорм малышей смесями на основе коровьего белка в родильных домах, высокая распространённость Хеликобактера и паразитов (в том числе, в Сибири). 

Все эти факторы бьют по самому уязвимому и нежному – желудку, печени, поджелудочной железе и кишечнику  человека. Весной обостряются хронические заболевания, в том числе желудочно-кишечного тракта.

Проблемы желудочно-кишечного тракта можно поделить по возрастам:

Младенцы (дети до 1 года):

  • Срыгивания, 
  • Запоры или пенистый, жидкий, зловонный  стул
  • Боли в животе, сильные колики, беспокойство при кормлении
  • Плохая прибавка веса

Дошкольники

В этом возрасте ребёнок переходит на «общий» стол, он активно просит взрослую еду, возникает проблема «перекусов», знакомство с конфетами. Дети начинают посещать детский сад, им не всегда нравится «детсадовская» еда, иногда они стесняются сходить на горшок в обществе. Они начинают болеть (особенно 1-ый год посещения садика), в том числе ротавирусными инфекциями,   и получать различные препараты, заражаются глистами.  Испытывают стресс из-за расставания с мамой.

В результате могут возникнуть проблемы:

  • Снижение аппетита вплоть до отказа от еды
  • Запоры, каломазание
  • Неустойчивый стул (запоры чередуются с поносами)
  • Боли в животе

Школьники

Переход на обучение в школе – стресс для ребёнка. Полностью изменяется программа питания. Очень многие дети вообще никогда не завтракают дома перед школой. Мало кто из школьников приобретает суп или  салат на деньги, выданные родителями. Скорее всего, ребёнок купит булочку, пиццу или сосиску.

Появляются проблемы:

  • Функциональные боли в животе, связанные со спазмами
  • Гастриты, заражение Хеликобактером.
  • Язвенная болезнь
  • Панкреатиты
  • Запоры (очень часто школьники даже не могут вспомнить, когда в последний раз ходили в туалет)
  • Рефлюксы (отрыжки)

Студенты и взрослые:

Нарастает хронический стресс – экзамены, боязнь потерять работу, конфликты в семье и на работе. По статистике, до 40%взрослых утром не завтракают. На работе или в ВУЗе тоже не всегда есть возможность кушать правильную пищу. Несбалансированные диеты истощают клетки печени и энтероциты – клетки кишечника.

К «детским» проблемам присоединяются «взрослые»:

  • Желчно-каменная болезнь
  • Холециститы
  • Колиты, энтероколиты
  • Гепатиты, жировой гепатоз печени, цирроз,

Пожилой возраст:

Появляются серьёзные проблемы со стулом (атонические запоры) из-за малоподвижного образа жизни.

Присоединяются хронические заболевания – сахарный диабет, гипертония, инсульты. Пожилые люди, как правило, принимают много препаратов и у всех лекарств есть побочные эффекты. Очень важно рано диагностировать онкологию.

Врач гастроэнтеролог может назначить исследования: Развёрнутый и биохимический  анализ крови, копрологию,  анализ кала на скрытую кровь,  УЗИ, ФГС, МРТ, дуоденальное зондирование, анализы на скрытых паразитов и онкомаркёры.

Шитикова Юлия Сергеевна, к тому же, универсальный специалист – Врач Общей Практики,  Гастроэнтеролог и врач УЗИ (последнее обучение – сентябрь 2017г. КрасГМУ сертификационный цикл по специальности “Гастроэтерология”.

28 октября 2017г. – Межрегиональная научно- практическая конференция с международным участием “Инфекционные болезни : диагностика и лечение”

Диета–микробиом–заболевание: изучение влияния диеты на устойчивость к инфекционным заболеваниям посредством изменения микробиома кишечника

PLoS Pathog. 2019 Октябрь; 15(10): e1007891.

Erica V. Harris

Факультет биологии, Исследовательский центр О. Уэйна Роллинза, Университет Эмори, Атланта, Джорджия, Соединенные Штаты Америки

Jacobus C. de Roode

Факультет биологии, Исследовательский центр О. Уэйна Роллинза, Университет Эмори, Атланта, Джорджия, Соединенные Штаты Америки

Николь М.Gerardo

Факультет биологии, Исследовательский центр О. Уэйна Роллинза, Университет Эмори, Атланта, Джорджия, Соединенные Штаты Америки

Четан Э. Читнис, редактор

Факультет биологии, Исследовательский центр О. Уэйна Роллинза, Университет Эмори, Атланта, Джорджия, Соединенные Штаты Америки

Институт Пастера, ФРАНЦИЯ

Авторы заявили об отсутствии конкурирующих интересов.

Эта статья находится в открытом доступе и распространяется в соответствии с лицензией Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания оригинального автора и источника.Эта статья была процитирована другими статьями в PMC.

Abstract

Абиотические и биотические факторы могут влиять на устойчивость хозяина к паразитам. Диета хозяина и микробиом кишечника хозяина являются двумя все более признанными факторами, влияющими на устойчивость к болезням. В частности, недавние исследования показывают, что (1) определенные диеты могут уменьшить паразитизм; (2) диеты могут изменить микробиом кишечника; и (3) кишечный микробиом может уменьшить паразитизм. Эти три отдельных взаимосвязи предполагают существование косвенных связей, посредством которых диеты снижают паразитизм за счет изменения микробиома кишечника.Однако такие связи редко рассматриваются и еще реже подтверждаются экспериментально. Это удивительно, потому что все чаще обсуждают терапевтический потенциал диет и кишечных микробиомов в борьбе с инфекционными заболеваниями. Чтобы прояснить эти потенциальные косвенные связи, мы рассматриваем и изучаем исследования широкого круга систем животных, обычно используемых в исследованиях диеты, микробиома и болезней. Мы также изучаем относительные преимущества и недостатки конкретных систем для изучения этих косвенных связей и делаем вывод, что мыши и насекомые в настоящее время являются лучшими системами животных для проверки влияния измененных диетой защитных микробиомов кишечника на инфекционные заболевания.Сосредоточив внимание на этих системах, мы предоставляем экспериментальные рекомендации и выделяем проблемы, которые необходимо преодолеть. Хотя предыдущие исследования рекомендовали эти системы для исследования микробиома, здесь мы особенно рекомендуем эти системы из-за их доказанной взаимосвязи между диетой и паразитизмом, между диетой и микробиомом, а также между микробиомом и устойчивостью к паразитам. Таким образом, они обеспечивают прочную основу для изучения трехстороннего взаимодействия между диетой, микробиомом и инфекционными заболеваниями.

Введение

Паразиты могут серьезно снизить приспособленность хозяина, а защита хозяина от паразитов находится под жестким отбором. Хозяев и паразитов часто изучают как парные взаимодействия [1] без учета среды, в которой они взаимодействуют [2]. Это проблематично, поскольку биотические и абиотические факторы могут оказывать сильное влияние на устойчивость хозяина к паразитарной инфекции [3,4]. Одним из все более признаваемых экологических факторов, влияющих на заболевание, является диета хозяина (4). Диета хозяина также играет важную роль в формировании кишечного микробиома у широкого круга хозяев (4).

Прямые и косвенные связи между диетой хозяина, микробиомом кишечника хозяина и паразитами.

Исследования пчел независимо друг от друга показали, что диеты модулируют устойчивость к паразитам [9,21], диеты изменяют микробиомы кишечника [75], а микробиомы кишечника модулируют паразитизм [90,107]. Однако неизвестно, существует ли косвенная связь между этими тремя, основанная на этих прямых отношениях. В качестве альтернативы, иммунная система хозяина может косвенно изменить это потенциальное трехстороннее взаимодействие, модулируя антимикробные пептиды или рецепторы распознавания образов через диету или кишечный микробиом для борьбы с паразитами [11, 110].

Системы животных, демонстрирующие три отдельные прямые связи между диетой, паразитами и кишечным микробиомом.

Мыши и насекомые — идеальные системы для изучения потенциальной косвенной, трехсторонней связи благодаря системам, контролируемым рационом хозяина, податливой и относительно простой микробиоте и податливости паразитов.

Кишечный микробиом, в свою очередь, может быть решающим фактором инфекционных заболеваний. Сложное сообщество микроорганизмов, населяющих пищеварительный тракт животного, составляет микробиоту кишечника, а их коллективное генетическое содержимое составляет микробиом кишечника.Изменения в составе и разнообразии микробного сообщества, связанного с кишечником, были связаны с инфекцией Clostridium difficile у людей [5] и инфекцией малярии у комаров [6].

Текущее понимание, таким образом, показывает три важных взаимосвязи: (1) диета может изменить устойчивость к болезням; (2) диета может влиять на микробиом кишечника; и (3) микробиом кишечника может снижать или повышать устойчивость к болезням. Потенциальная связь между этими отношениями остается недостаточно изученной и плохо изученной.В частности, хотя эти взаимосвязи предполагают, что диеты могут повышать или снижать устойчивость к болезням за счет изменения микробиома кишечника хозяина, исследований, подтверждающих это, не проводилось. Вместо этого в большинстве исследований независимо изучались взаимосвязи между диетой и устойчивостью к болезням, диетой и кишечным микробиомом, а также кишечным микробиомом и устойчивостью к болезням (). Например, исследования отдельно показали, что диета влияет на микробиом кишечника и что микробиом кишечника влияет на устойчивость к паразитам как у мышей, так и у комаров, инфицированных Plasmodium spp.[7,8]. Неизвестно, является ли эта повышенная резистентность результатом измененного диетой микробиома. Точно так же медоносные пчелы, которых кормят старыми диетами со смешанной пыльцой, имеют повышенную относительную численность Frischella perrara , и эти диеты также повышают устойчивость к бактериальным и микроспоридным паразитам; также неизвестно, является ли эта повышенная резистентность результатом измененного диетой микробиома [9]. Также важно отметить, что иммунитет хозяина может играть ключевую роль в прямом или косвенном модулировании взаимодействий диета-микробиом-болезнь [10].Например, Ф . perrara , тот же кишечный микроб, который коррелирует со смешанными пыльцевыми диетами пожилых людей, также активирует иммунную систему медоносных пчел [11], что затрудняет определение последовательности событий между метаболизмом диеты хозяина, активацией иммунитета хозяина и ингибированием паразитарной инфекции. . В этом обзоре мы сосредоточимся на взаимодействии между диетой хозяина, кишечным микробиомом и паразитами без особого рассмотрения роли иммунитета хозяина в большинстве случаев. В конечном счете, было бы интересно исследовать влияние диеты и микробиома на иммунитет, где это возможно.

Способность диеты изменять устойчивость к инфекционным заболеваниям за счет изменения микробиома кишечника актуальна для самых разных систем животных, включая человека. В частности, учитывая растущие призывы к созданию персонализированных диет для увеличения микробиома кишечника человека [12], крайне важно определить, как такие изменения в диете сделают хозяев более или менее восприимчивыми к возбудителям инфекционных заболеваний. Поскольку наше внимание сосредоточено на инфекционных заболеваниях, мы определяем паразитов как микроорганизмы, которые могут вызывать инфекционные заболевания (бактерии, грибы, простейшие и вирусы).Цель этого обзора — предоставить рекомендации по изучению того, как диеты косвенно изменяют устойчивость к инфекционным заболеваниям, изменяя микробиом кишечника, и предложить подходящие модельные системы для решения этого вопроса. Используя ключевые ссылки, актуальные для разных таксонов, мы начнем с рассмотрения вышеупомянутых двусторонних отношений. Затем мы обсудим проблемы, которые необходимо преодолеть, чтобы конкретно интегрировать эти отдельные отношения в единую структуру. Наконец, мы синтезируем методы, с помощью которых мы можем эмпирически проверить это потенциальное трехстороннее взаимодействие.Наш обзор и рекомендации не претендуют на то, чтобы быть исчерпывающими, а скорее сделать шаг к продвижению нашего понимания того, как диета хозяина и кишечный микробиом взаимодействуют, чтобы стимулировать устойчивость к инфекционным заболеваниям.

Рационы модулируют устойчивость к паразитам

Было показано, что некоторые рационы обеспечивают защиту от инфекционных заболеваний в различных системах животных. В частности, многие животные могут получать антипаразитарную диету, поедая растения с токсичными защитными химическими веществами. Зараженные нематодами шимпанзе, например, едят горькие растения с нематоцидными соединениями [13,14], а гусеницы шерстистого медведя, зараженные паразитоидными мухами, увеличивают потребление диетических алкалоидов, снижая инфекцию [15].Точно так же личинки бабочки монарха меньше страдают от протозойной инфекции при питании растениями молочая с высокой концентрацией сердечных гликозидов [16–19], бабочки аниции шахматной пятнистости более иммунокомпетентны, когда питаются растениями с более высокой концентрацией иридоидных гликозидов [20], а шмели, потребляющие алкалоиды богатый нектаром опыт снижает заражение трипаносомными кишечными паразитами [21,22]. Таким образом, многие травоядные используют защитную химию растений, чтобы уменьшить заражение и рост паразитов.

Животные также могут повышать устойчивость к паразитам, увеличивая качество и типы продуктов, которые они едят.Например, медоносные пчелы с разнообразной пыльцевой диетой более иммунокомпетентны, чем особи, питающиеся монофлорой [23]. Точно так же выращенные в лаборатории личинки медоносных пчел приобретают устойчивость к грибковым патогенам, когда бедные питательными веществами диеты дополняются полифлорной пыльцой [24]. Плодовые мушки, которых кормят рационами с низким содержанием сахара, имеют более низкую бактериальную патогенную нагрузку и меньшую смертность, чем при кормлении рационами с высоким содержанием сахара [25]. У мышей, инфицированных простейшими паразитами, вызывающими болезнь Шагаса, снижается паразитемия при кормлении рационом с высоким содержанием жиров [26].Как и в случае с другими животными, питание людей является сильным фактором заражения паразитами. Недоедание человека является глобальной проблемой, связанной с дефицитом микроэлементов и иммунодефицитом. Например, недоедающие дети в Папуа-Новой Гвинее подвергаются более высокому риску заражения малярией. Дополнение их рациона витамином А снижает как плотность Plasmodium falciparum , так и симптомы заболевания, включая лихорадку [27].

Диета может оказывать сложное влияние на способность хозяина бороться с инфекцией.Добавление диетического компонента не всегда может положительно коррелировать с устойчивостью к паразитам; влияние диеты на паразитов может иметь отрицательную корреляцию, при этом увеличение пищевых компонентов коррелирует со снижением устойчивости к паразитам. Например, у мышей, инфицированных простейшими паразитами, вызывающими мышиную малярию, и получавших диету с добавкой фолата, снижалась выживаемость и снижалась резистентность по сравнению с мышами, получавшими стандартную дозу рекомендуемой фолиевой кислоты [28]. Точно так же большие восковые моли, инфицированные грибковым паразитом и получавшие рацион с высоким содержанием питательных веществ, были более восприимчивы и имели более высокий уровень смертности, чем инфицированные особи, выращенные на рационе с низким содержанием питательных веществ [29].

Таким образом, диеты могут обеспечить защиту от инфекционных заболеваний за счет прямого вмешательства путем химического ингибирования паразитов или изменения доступных ресурсов для борьбы с патогенами. В качестве альтернативы, диеты могут обеспечить защиту посредством изменения микробной конкуренции, которая до недавнего времени в значительной степени игнорировалась и которую мы рассмотрим далее.

Диета изменяет микробиомы кишечника

Как и другие экологические сообщества, сообщества кишечных микробов представляют собой группы взаимодействующих видов, которые встречаются вместе в одно и то же время в определенном месте.Недавние технологические достижения расширили возможности изучения состава и функции кишечного сообщества [30,31]. Микробные сообщества кишечника имеют структуру, которая характеризуется видовым богатством (количеством видов), видовой равномерностью (относительная численность каждого вида) и видовым разнообразием (показатель, учитывающий как видовое богатство, так и равномерность). Поскольку разные виды микробов могут играть разные роли, общая функция этих сообществ обычно характеризуется анализом общего генетического содержания (метагеномика) и экспрессии генов (транскриптомика).

Различные виды хозяев имеют разные микробиомы, определяемые генетикой хозяина, историей эволюции и эволюционной диетической специализацией [32–34]. Термиты, например, являются потребителями растительных материалов на основе целлюлозы, но не могут напрямую расщеплять целлюлозу; вместо этого они содержат вертикально передающиеся микробные кишечные симбионты – бактерии, протисты и археи, – которые содержат гены переваривания целлюлозы [35]. Термиты, которые специализируются на различных группах питания (например, древесине, траве, гумусе, почве и грибах), содержат значительно различающиеся наборы кишечных микробов [36], что является признаком эволюционировавшей специализации микробиома.

Однако микробиом также пластичен, и изменения в диете могут изменить состав микробного сообщества кишечника [37,38] и, таким образом, могут существенно повлиять на функции сообщества. Например, у термитов, питающихся древесиной, изменения в рационе сопровождаются сдвигами в доминировании видов простейших [39]. У людей серьезные изменения в диете (т.е. переход от диеты с высоким содержанием жиров/с низким содержанием клетчатки к диете с низким содержанием жиров/с высоким содержанием клетчатки) также значительно влияют на состав кишечного сообщества в течение коротких периодов времени [38,40].Тем не менее, микробиом кишечника человека относительно стабилен с течением времени [40,41], при этом долгосрочная диета сильно коррелирует с бактериальным энтеротипом, классификация образцов микробиома основана на анализе кластеризации в ординационном анализе [37,42,43]. После нарушения питания сообщества, как правило, возвращаются к своему первоначальному составу сообщества и стабилизируются. Хотя такие пластические изменения кишечного микробиома в ответ на диетические сдвиги наблюдались в животном мире [44–49], неясно, изменяют ли диеты микробиом с помощью сходных механизмов в разных системах и являются ли эти изменения в целом стабильными или преходящими.

Добавки, добавленные в рацион, также могут модулировать микробиоту кишечника. Пребиотики — это пищевые добавки, которые после употребления хозяином действуют как пища или субстрат для микробиоты хозяина. В частности, «пребиотический эффект» представляет собой избирательную стимуляцию роста и метаболической активности одного или ограниченного числа таксонов в микробиоме кишечника, что приносит пользу для здоровья хозяина [50,51]. Распространенным пребиотиком для человека является инулин и его химические производные [52]. Инулин представляет собой растворимое волокно, содержащееся во многих растениях, встречающихся в природе в пищевых продуктах, таких как корень цикория, чеснок и лук [53], а также производится в промышленных масштабах.В клинических исследованиях у здоровых людей, которым в течение нескольких недель вводили продукты, содержащие инулин, наблюдалось изменение состава микробного сообщества со значительным увеличением Bifidobacteria [54,55]. В свою очередь, Bifidobacteria и Lactobacilli являются распространенными родами, используемыми в качестве пробиотиков у нескольких хозяев [7,56]. Пробиотики представляют собой неместные живые микроорганизмы, которые перорально потребляются хозяевами и полезны для здоровья хозяина. Пробиотики естественным образом встречаются в ферментированных продуктах, таких как йогурт.Комбинированный синергетический эффект пребиотиков и пробиотиков является синбиотиком [57]. Бактерии Bifidobacteria и Lactobacilli могут играть роль в лечении или профилактике некоторых инфекций человека, включая инфекции пищеварительного тракта человека, вызванные C . difficile и вагинальные бактериальные инфекции человека [58,59]. Однако может быть трудно выяснить эффективность и механизмы действия пребиотиков и пробиотиков у людей. Интересно, что использование пребиотических и пробиотических добавок в более послушных модельных системах, таких как пчелы, креветки и рыба, предполагает, что такие добавки могут придавать антимикробную активность, повышать экспрессию иммунных генов и снижать нагрузку бактериальных патогенов и кишечных паразитов в этих системах. [60–62].

Основной проблемой при выяснении влияния диеты на микробиом кишечника человека является наличие смешанных факторов. Например, человеческие дети из сельской Африки и современной Западной Европы, питающиеся растительной и животной пищей, соответственно, демонстрируют значительные различия в бактериальных сообществах: роды Prevotella , Xylanibacter и Treponema широко распространены в сельских африканцах, но отсутствует у западных европейцев [45]. Бактерии этих родов содержат гены, участвующие в гидролизе целлюлозы, и связаны со способностью метаболизировать неперевариваемые полисахариды, обычно встречающиеся в растениях.Несмотря на очевидную связь между диетой и составом микробиоты, другие факторы, помимо диеты, такие как генетика хозяина, раса, этническая принадлежность, различия в использовании антибиотиков и географически различные факторы окружающей среды, также могут играть роль. Исследованиям микробиома человека также препятствуют логистические ограничения, такие как непоследовательная самооценка в вопросниках о питании и бюджетные ограничения, которые не позволяют снабжать большие когорты контролируемыми диетами в течение длительного периода времени [44,63]. По иронии судьбы, это означает, что, несмотря на то, что здоровье человека является основным направлением исследований диеты и кишечного микробиома, люди являются субоптимальной системой для понимания того, как диета формирует динамику микробного сообщества.Поэтому, чтобы лучше понять механистические связи между диетой и микробиомом кишечника, полезно изучать системы, в которых легче контролировать смешанные факторы [64–67].

Мыши являются наиболее распространенной животной моделью, используемой для переноса исследований микробиома кишечника на здоровье человека, отчасти потому, что микробные сообщества человеческих фекалий могут успешно колонизировать безмикробные инбредные штаммы мышей [44]. Основные диетические сдвиги от диеты с низким содержанием жиров / высоким содержанием клетчатки к диете с высоким содержанием жиров / высоким содержанием сахара у таких мышей вызывают быстрые изменения в структуре и функции микробного сообщества [44,68].Таким образом, как и у людей, диета является основным фактором состава микробиома у мышей.

Насекомые также представляют собой отличные системы для изучения влияния диеты на микробиом кишечника [64]. Подобно термитам, упомянутым ранее, микробные сообщества видов плодовых мух различаются в зависимости от различных фруктов и цветов, которыми эти виды специализируются для питания. Микробные сообщества мух также пластичны и меняются при изменении рациона [69]. Например, в пределах одной популяции мухи Drosophila elegans питание двумя разными родами цветковых растений приводит к разной численности доминирующих семейств бактерий.Точно так же кормление Drosophila suzukii фруктовыми естественными и нефруктовыми искусственными диетами приводит к изменению сообществ [70]. Диета также влияет на состав кишечного микробного сообщества Drosophila melanogaster [71–73]. Например, изменение содержания жира, особенно с высокого содержания жира на отсутствие жира (т. е. голодание), в D . Диета melanogaster приводит к изменению обилия некоторых бактерий, а также изменению общего числа микробов в сообществе [74].

Питание также сильно влияет на микробные сообщества пчел, бабочек и мотыльков. В микробных сообществах кишечника пчел преобладают восемь доминирующих бактериальных филотипов (бактериальные кластеры, основанные на сходстве последовательностей), которые можно модифицировать с помощью альтернативных диет с сиропом и пыльцой [33,75]. Точно так же зависимость состава микробного сообщества кишечника от альтернативных личиночных растений-хозяев широко распространена у видов чешуекрылых [76–79]. Например, личинки табачной листовертки, питающиеся тремя альтернативными растениями-хозяевами, имеют значительно разные бактериальные семейства [76], и существуют различия в бактериальных филотипах в микробиоме непарного шелкопряда, основанные на альтернативных диетах растений [80].Хотя эти примеры демонстрируют, что диета влияет на микробиом кишечника во многих животных системах, механизмы, с помощью которых это происходит, в значительной степени неизвестны (вставка 1).

Вставка 1. Важные соображения при изучении взаимодействий рациона, микробиома и болезни

  1. Сравнение микробных сообществ . Серьезной проблемой, стоящей перед областью исследования микробиома, является определение того, какие вариации следует оценивать количественно и какие вариации имеют значение [30, 111, 112]. Хотя охарактеризовать микробное сообщество кишечника становится относительно просто, гораздо сложнее сделать вывод о том, какие различия между экспериментальными группами являются биологически значимыми.Различия, которые могут влиять на фенотипы хозяев, могут заключаться в наличии и разнообразии микробного сообщества, наличии определенных таксонов, обилии определенных таксонов или экспрессии микробных генов, независимо от происхождения генома. Технологические подходы различаются по степени, в которой они могут охарактеризовать эти различия. Кроме того, в случае различий на таксономическом уровне, исследования по-разному определяют состав сообщества на уровне типа (Wu и коллеги, 2011), рода [45], вида [113] и штамма [114, 115].Это несоответствие демонстрирует, что нет рабочей книги, для которой из них можно дать количественную оценку, что требует тщательного изучения каждой изучаемой системы.

  2. Учет индивидуальных вариаций микробиома . Существуют значительные индивидуальные различия в составе кишечного микробиома, которые могут быть связаны с генетикой, абиотическими или биотическими факторами или стохастичностью. Кроме того, кишечные микробные сообщества меняются в процессе развития, иногда с высокой сменой видов, добавляя больше вариаций в животную систему [116,117].Из-за множества источников изменчивости микробиома изучение связи между диетой, микробиомом и заболеванием может быть затруднено, поскольку микробиом может варьироваться по причинам, отличным от диеты. Таким образом, ключевым моментом является определение соответствующей изменчивости из-за изменений в рационе и определение того, как эти конкретные изменения коррелируют с устойчивостью к болезням.

  3. Определение того, какие компоненты рациона влияют на микробиом и восприимчивость к заболеваниям . Диета состоит из многих компонентов. Поэтому крайне важно, чтобы исследования сначала четко определяли, какие диетические компоненты или пищевые добавки учитываются при оценке влияния диеты на устойчивость к болезням или на микробиом.На сегодняшний день несколько различных пищевых компонентов оказывают влияние на микробиом кишечника у животных, включая клетчатку, белок, вторичные метаболиты растений, типы жиров, пищевые бактерии и пребиотики [12,45,118]. Интересующие диетические компоненты могут быть питательными или токсичными, в зависимости от системы [119]. Если наблюдается диетический сдвиг для модуляции микробиома кишечника или устойчивости к болезням, то следует охарактеризовать точную природу того, какие компоненты этого рациона меняются.Системы, в которых диетой можно экспериментально управлять, идеальны, поскольку контролируемые диеты устраняют смешанные диетические переменные, позволяя наблюдать прямое влияние одного диетического компонента на состав микробиоты кишечника и на восприимчивость к заболеваниям. Кроме того, такие диеты могут быть стандартизированы, что дает возможность для сравнения между исследованиями. Однако одним из недостатков таких контролируемых диет является то, что их нельзя обобщить на естественные диеты [111]. Сочетание химически четко определенной диеты с естественной диетой в системах животных должно дать новое представление о роли диеты в изменении микробиома и заболеваниях [47].

Микробиомы кишечника модулируют паразитизм

Микробные симбионты, микробы, образующие длительные ассоциации с хозяевами, могут играть важную роль в здоровье животных, особенно в смягчении последствий инфекционных заболеваний. Например, у тлей есть бактериальные симбионты, не связанные с кишечником, которые защищают их от грибковых патогенов и паразитоидных ос [81,82]. Точно так же осы-пчелиные волки включают симбиотические бактерии в свои личиночные коконы для защиты от патогенных грибов [83,84], а саламандры имеют кожные бактериальные симбионты, которые продуцируют противогрибковые метаболиты против хитридиевого грибка [85].Теперь ясно, что микробные симбионты, связанные с кишечником, также могут играть важную роль в динамике инфекционных заболеваний, при этом изменения в структуре и функциях микробного сообщества коррелируют с паразитарной инфекцией в некоторых системах. Эти структурные изменения сообщества могут быть вызваны дисбиозом (или нарушением «здорового» микробиома) или заражением паразитами. Хотя оба состояния потенциально могут изменить резистентность к паразитам, их механизмы могут быть разными. В случае дисбактериоза кишечные патогены могут использовать пустую нишу или подвергаться физиологическому стрессу для успешной колонизации кишечника.Системные паразиты могут использовать стресс организма для распространения и размножения по всему телу. Хорошо известным примером является микробная защита от бактерии C . difficile , который является основной причиной хронической диареи после длительного применения антибиотиков у людей. Индуцированное антибиотиками нарушение микробного сообщества кишечника способствует повышенному росту C . difficile и рецидивирующая инфекция. Клинические трансплантаты микробиома через фекалии (т.э., фекальные трансплантаты) от здоровых доноров можно использовать для лечения заболевания у инфицированных реципиентов путем восстановления кишечного сообщества [86–89]. Следовательно, C . Инфекция difficile использует дисбиоз, размножаясь в бактериальном сообществе кишечника, и показывает, что состав сообщества и, возможно, количество бактерий имеют решающее значение для успеха инвазии паразита. Точно так же стерильные пчелы, питающиеся сахаром и обработанные антибиотиками, страдают от повышенной трипаносомной инфекции по сравнению с пчелами с полным микробиомом кишечника, а фекальные трансплантаты восстанавливают микробиоту кишечника пчел и повышают устойчивость [90].Хотя защитный эффект кишечного микробиома против паразитов очевиден в этих и других системах, свойства микробиома, уменьшающие паразитизм, известны редко.

Защитное действие кишечного микробиома может быть обусловлено наличием и разнообразием микробного сообщества, наличием определенных таксонов или наличием определенных генов в микробном сообществе (). Несколько примеров иллюстрируют важность сообщества. Как упоминалось ранее, кишечный микробиом пчел обеспечивает защиту от трипаносомной инфекции [90,91]; однако потребление одного класса бактерий не снижает нагрузку на трипаносомы.Точно так же разнообразное кишечное сообщество пчел также защищает от бактериального патогена Paenibacillius larvae , возбудителя американского гнильца [92–94]; хотя 11 изолированных, культивируемых бактериальных филотипов по-разному ингибируют рост штаммов паразитов in vitro, только смесь всех 11 бактериальных филотипов полностью ингибирует рост P . личинки in vitro и in vivo. У пустынной саранчи также уменьшилась колонизация патогенами с увеличением количества видов кишечных бактерий [95]: в частности, присутствие 2 и 3 видов бактерий обеспечивает большую защиту от Serratia marcescens , чем присутствие только 1 вида.Важность микробного сообщества может быть обусловлена ​​дополнительным и синергетическим противопаразитарным действием различных микробов. Хотя преимущества разнообразного микробного сообщества широко признаны, механизмы защиты плохо изучены на животных моделях [96,97]. Потенциальные механизмы включают высокое функциональное разнообразие [98], повышенную функциональную избыточность [99] и метаболическое перекрестное питание [96, 100].

Свойства кишечного микробиома, которые могут уменьшить паразитизм.

Защитное действие кишечного микробиома может быть обусловлено устойчивостью к колонизации, обилием и равномерностью одного или нескольких видов на различных таксономических уровнях, наличием или отсутствием определенных видов или наличием или обилием определенных генов. Эти сценарии не являются исчерпывающими и не взаимоисключающими [107].

Наличие определенных таксонов также может быть защитным свойством микробиома кишечника. Несколько связанных с малярией исследований на животных обнаружили корреляцию между определенными бактериальными таксонами и инфекцией Plasmodium .Малийские дети с более низким риском заражения малярийным паразитом P . falciparum имеют более высокую долю родов Bifidobacterium и Streptococcus по сравнению с лицами с более высоким риском [101]. Этот пример, как и другие, просто демонстрирует корреляцию между наличием и отсутствием определенных таксонов кишечных бактерий и паразитов [102,103]. Демонстрируя причинно-следственную связь, у комаров Anopheles проглатывание и колонизация Chromobacterium приводит к индукции иммунных генов и снижению восприимчивости к P . falciparum и вирус денге [104]. Точно так же мыши, получавшие антибиотики и инокулированные культивируемым микробным коктейлем, содержащим Bifidobacterium и Lactobacillus , демонстрируют снижение паразитарной нагрузки малярией по сравнению с контрольными мышами, что позволяет предположить, что эти таксоны оказывают модулирующее действие на паразитизм [7].

Иногда модулирующее действие на защиту оказывает не наличие микробного сообщества кишечника или присутствие определенных таксонов в этом сообществе, а выраженные гены сообщества.Например, у лабораторных мышей могут быть кишечные бактерии, экспрессирующие гликановые поверхностные белки. Эти гликановые поверхностные белки вырабатывают гликан-специфические антитела, которые атакуют Plasmodium spp. при передаче от комаров Anopheles мышам, у которых отсутствует ген гликанового поверхностного белка [105]. Точно так же мыши, колонизированные бактериями Bifidobacterium breve , экспрессирующими экзополисахариды, имеют значительно меньшую колонизацию и устойчивость мышиного бактериального патогена по сравнению с мышами без бактерий, экспрессирующих ген эксполисахарида [106].Защитный эффект B . breve связан с кластером генов, ответственным за экспрессию экзополисахаридов. Эти два исследования демонстрируют, что защиту можно индуцировать или ингибировать патогенез, манипулируя экспрессией генов кишечных микробов. Важно отметить, что, учитывая, что бактерии могут горизонтально переносить гены, защита от паразитарной инфекции, обеспечиваемая экспрессированными генами, может сохраняться в микробном сообществе независимо от присутствия определенных таксонов.Однако эти сценарии не являются исчерпывающими и взаимоисключающими. Например, у пчел высокое разнообразие сообщества, высокая численность бактерий и присутствие таксонов способствуют защите от трипаносомного паразита [107].

Экспериментальные подходы к изучению взаимодействий диеты, микробиома и болезни

Как видно из предыдущих примеров, диеты изменяют как устойчивость к паразитам, так и микробиомы кишечника у ряда животных. Поскольку микробиом является важным фактором устойчивости к паразитам, эти взаимосвязи предполагают, что диеты могут изменять устойчивость к паразитам за счет своего воздействия на микробиом кишечника.Однако, насколько нам известно, влияние диеты на восприимчивость к инфекционным заболеваниям через их воздействие на микробиом не было однозначно продемонстрировано ни в одной системе. Нечеловеческие животные системы, которые отдельно продемонстрировали, что диета изменяет устойчивость к паразитам, диета изменяет микробиом кишечника, а микробиом кишечника изменяет паразитизм, являются идеальными системами для эмпирической проверки потенциала диеты, изменяющей устойчивость к болезням путем модулирования микробиома кишечника. Чтобы полностью изучить эту связь, исследователи должны изучить диету, микробиом и болезнь в тандеме в контролируемых экспериментальных условиях.Наилучшие тематические исследования, основанные на современной литературе, представляются экспериментально управляемыми системами насекомых и мышей (вставка 2).

Вставка 2. Тематическое исследование: состав микробного сообщества кишечника влияет на тяжесть течения малярии у мышей

В одном исследовании мышиной малярии изучались три взаимосвязи, которым посвящен данный обзор: (1) диета изменяет устойчивость к болезни; (2) диеты изменяют микробиом кишечника; и (3) кишечные микробиомы модулируют устойчивость к болезням [7]. Это исследование впервые показало, что генетически инбредные мыши (C57BL/6), инфицированные Plasmodium , значительно различались по паразитарной нагрузке в зависимости от источника мыши.Мыши из лаборатории Джексона (Jax) и Taconic (Tac) имели значительно меньшее количество паразитов и отсутствие смертности по сравнению с мышами Национального института рака/Charles River (NCI) и мышами Harlan (Har). Чтобы проверить, повышает ли диета устойчивость к малярийной инфекции, мышей Jax (резистентных) и NCI (восприимчивых) кормили двумя коммерческими диетами: NIH-31 и Teklad 22/5. Хотя у восприимчивых мышей NCI, которых кормили этими диетами, паразитемия не наблюдалась, диета Teklad 22/5 значительно увеличивала паразитемию и смертность у резистентных мышей Jax по сравнению с диетой NIH-31.Это исследование также показало, что альтернативные диеты влияют на состав микробного сообщества кишечника: у мышей Jax, получавших диету Teklad 22/5, была более низкая относительная численность бактерий семейства Peptostreptococcaceae по сравнению с мышами Jax, получавшими диету NIH-31. Затем исследователи использовали фекальные трансплантаты, микробные добавки и иммунные анализы, чтобы продемонстрировать, что кишечный микробиом снижает паразитизм. Однако вместо того, чтобы проводить это исследование с мышами аналогичного происхождения, которых кормили альтернативными диетами, исследователи использовали мышей с разной устойчивостью из-за разного происхождения (Jax и Tac против NCI и Har).Таким образом, несмотря на наличие косвенной связи, это исследование еще не продемонстрировало однозначно, что диеты изменяют устойчивость к болезням путем модулирования кишечного микробиома.

Необходимость одновременного изучения питания, микробиома и болезней становится очевидной, если попытаться связать эти три явления в отдельных исследованиях. Например, исследования пчел показали, что диеты, богатые алкалоидами, повышают устойчивость к различным паразитам, включая трипаносомы, грибки и микроспоридии [9,21,24]. Отдельные исследования показали, что пыльца, дополненная нектаром, изменяет состав кишечного микробного сообщества личинок пчел [75], и, как подчеркивалось ранее, другие исследования показали, что микробы пчелиного кишечника могут повышать устойчивость к патогенам и паразитам [90,92].Осложнения возникают при попытке связать эти исследования. Во-первых, рассматриваемые диетические компоненты различались в разных исследованиях (вставка 1). Во-вторых, двусторонние отношения были изучены на разных стадиях жизни: в то время как влияние алкалоидных диет на трипаносому Crithidia bombi было исследовано на взрослых пчелах [21], а влияние кишечных микробов на C . bombi изучали также на взрослых особях [90], влияние белковых и богатых сахаром рационов на микробные сообщества пчел исследовали на личинках пчел [75].Точно так же у комаров определенная водная диета личинок повышает устойчивость к Plasmodium spp. а также увеличивает относительную численность двух семейств бактерий [8]. Отдельные исследования показали, что кишечные микробы комаров снижают паразитизм с помощью Plasmodium [6, 104]. В идеале исследователи должны изучить все три взаимодействия на разных стадиях жизни, потому что различия в питании на неполовозрелых стадиях могут оказывать влияние на взрослых особей на протяжении всей жизни. Как и у пчел, компоненты рациона и этапы жизни комаров в этих исследованиях были разными: рыбные хлопья для водных личинок и сахара и кровь для взрослых особей.Нам известно только об одном исследовании на мышах, в котором рассматривались все три отдельных компонента [7]. Однако даже в рамках этого исследования неясно, опосредует ли диета свои противопаразитарные эффекты путем модуляции микробиома кишечника (вставка 2).

Чтобы изучить потенциальное влияние измененных диетой защитных микробиомов кишечника на инфекционные заболевания, мы предлагаем несколько рекомендаций. Во-первых, в исследованиях следует использовать только животные системы, в которых диета хозяина повышает устойчивость к управляемым паразитам.Во-вторых, необходимо тщательно контролировать генетику хозяина. В идеале генетику хозяина можно контролировать путем тестирования людей с идентичным или схожим генетическим фоном, таких как монозиготные близнецы или полные братья и сестры. В качестве альтернативы, неродственные лица могут быть разделены на несколько видов лечения, чтобы уменьшить искажающие факторы. В-третьих, важно определить, связаны ли альтернативные диеты с изменениями в микробном сообществе, и если да, то попытаться выяснить, ответственны ли одни и те же диетические компоненты за изменение резистентности к паразитам.В-четвертых, путем объединенного исследования следует напрямую продемонстрировать, что изменчивость кишечного микробного сообщества, вызванная альтернативными диетами, коррелирует с восприимчивостью к заболеваниям. Особенно мощным подходом для этого теста является использование фекальных трансплантатов [7,44,90]. Помимо демонстрации того, что реальный измененный микробиом обеспечивает устойчивость к паразитам, тщательно обработанные фекальные трансплантаты также могут быть использованы для выяснения того, необходимо ли для защиты присутствие всего кишечного сообщества или присутствие и изобилие определенных таксонов более важны.Чтобы выявить защитный механизм присутствия и взаимодействия видов, культивированные микробные трансплантаты определенных членов сообщества оказались эффективными у пчел, комаров и мышей [7,92,104]. Заглушение генов членов микробного сообщества также является эффективным способом выяснить, ответственны ли присутствие и экспрессия определенных генов за защитный механизм кишечного микробиома, как показано на мышах [105,106]. Наконец, для систем животных с надежными генетическими инструментами, включая комаров и мотыльков, как иммунные гены хозяина, так и гены токсинов микробиома могут быть подавлены, чтобы определить их взаимодействие [6, 108, 109].

Заключение

Существующие исследования показывают, что диеты могут изменять устойчивость хозяина к паразитам путем модулирования микробиома кишечника, но убедительных исследований по-прежнему недостаточно. Хотя понимание взаимодействий между диетой, микробиомом и заболеванием имеет решающее значение для людей, мы предлагаем альтернативные модели животных для проверки фундаментальных свойств этого потенциального взаимодействия. Эти животные имеют отношение к сельскому хозяйству и эпидемиологии, и они позволяют проводить тщательно контролируемые эксперименты с небольшими ограничениями по размеру выборки.Что наиболее важно, это управляемые системы, которые имеют убедительные доказательства каждого отдельного взаимодействия: диеты модулируют устойчивость к паразитам, диеты изменяют кишечные микробиомы, а кишечные микробиомы модулируют паразитизм. Существующие экспериментальные инструменты теперь позволяют исследователям опираться на отдельные прямые взаимосвязи, чтобы определить, существует ли косвенная связь между диетой хозяина, микробиомом кишечника хозяина и паразитарной инфекцией. Выяснение важности и повсеместности такой связи поможет нам лучше понять терапевтический потенциал диет и кишечных микробиомов для борьбы с инфекционными заболеваниями.

Благодарности

Авторы благодарят Тиффани Алкайд за иллюстрации всех рисунков и сотрудников лабораторий Gerardo и de Roode за их полезные комментарии.

Заявление о финансировании

Эта работа поддерживается грантом NSF (IOS-1557724) для JCdR и NMG, NSF GRFP (DGE-1444932) для EVH и стипендией Woodrow Wilson MMUF Dissertation Fellowship (EVH). Спонсоры не участвовали в разработке исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Ссылки

1. Ламбрехтс Л., Феллоус С., Коэлла Дж.К. Коэволюционные взаимодействия между генотипами хозяина и паразита. Тенденции Паразитол. 2006; 22: 12–6. 10.1016/j.pt.2005.11.008 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]3. Волинска Дж., Кинг К.С. Окружающая среда может изменить отбор во взаимодействии хозяина и паразита. 2009; 25: 236–244. 10.1016/j.pt.2009.02.004 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]5. ван Нуд Э., Вриз А., Ньюдорп М., Фуэнтес С., Зотендаль Э.Г., де Вос В.М. и др. Дуоденальное вливание донорского кала при рецидивах Clostridium difficile .N Engl J Med. 2013; 368: 407–15. 10.1056/NEJMoa1205037 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]6. Донг Ю., Манфредини Ф., Димопулос Г. Влияние микробиоты средней кишки комара на защиту от малярийных паразитов. PLoS Патог. 2009;5: e1000423 10.1371/журнал.ppat.1000423 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]7. Вилларино Н.Ф., Леклер Г.Р., Денни Дж.Э., Диарт С.П., Хардинг С.Л., Слоан С.С. и др. Состав кишечной микробиоты модулирует тяжесть малярии. Proc Natl Acad Sci.2016; 113: 2235–2240. 10.1073/пнас.1504887113 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]8. Линенберг И., Кристофидес Г.К., Гендрин М. Диета личинок влияет на развитие комаров и восприимчивость к инфекции Plasmodium . Научный доклад 2016; 6: 38230 10.1038/srep38230 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]9. Маес П.В., Родригес П.П., Оливер Р., Мотт Б.М., Андерсон К.Е. Бактериальный дисбиоз кишечника, связанный с питанием, коррелирует с нарушением развития, повышенной смертностью и нозематозом у медоносных пчел ( Apis mellifera ).Мол Экол. 2016; 25: 5439–5450. 10.1111/меч.13862 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 10. Сансон С.Л., Коэн Дж., Ясунага А., Сюй Дж., Осборн Г., Субраманиан Х. и др. Зависимое от микробиоты праймирование противовирусного кишечного иммунитета у Drosophila . Клеточный микроб-хозяин. 2015; 18: 571–581. 10.1016/ж.чом.2015.10.010 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]11. Эмери О., Шмидт К., Энгель П. Стимуляция иммунной системы кишечным симбионтом Frischella perrara у медоносной пчелы ( Apis mellifera ).Мол Экол. 2017; 26: 2576–2590. 10.1111/меч.14058 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 12. Дерриен М., Вейга П. Переосмысление диеты для содействия симбиозу человека и микробов. Тенденции микробиол. 2017; 25: 100–112. 10.1016/j.tim.2016.09.011 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 13. Хаффман М.А., Готох С., Тернер Л.А., Хамаи М., Йошида К. Сезонные тенденции заражения кишечными нематодами и использование лекарственных растений среди шимпанзе в горах Махале, Танзания. Приматы. 1997; 38: 111–125. 10.1007/BF02382002 [CrossRef] [Google Scholar]14.Пейдж Дж. Э., Хаффман М. А., Смит В., Башни GHN. Химическая основа для Aspilia проглатывания листьев шимпанзе: повторный анализ. Дж. Хим. Экол. 1997; 23: 2211–2226. 10.1023/B:JOEC.0000006440.57230.a9 [CrossRef] [Google Scholar]15. Певица М.С., Мейс К.С., Бернейс Э.А. Самолечение как адаптивная пластичность: повышенное потребление растительных токсинов паразитирующими гусеницами. ПЛОС ОДИН. 2009;4: е4796 10.1371/journal.pone.0004796 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]16. Штернберг Э.Д., Лефевр Т., Ли Дж., де Кастильехо К.Л.Ф., Ли Х., Хантер М.Д. и др.Толерантность и устойчивость к болезням пищевых растений при естественном взаимодействии бабочка-растение-паразит. Эволюция. 2012; 66: 3367–76. 10.1111/j.1558-5646.2012.01693.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 17. Тао Л., Хоанг К.М., Хантер М.Д., де Руд Дж.К. Затраты на приспособление к лекарствам для животных: противопаразитарные растительные химические вещества снижают приспособленность хозяев-бабочек-монархов. Дж Аним Экол. 2016; 85: 1246–1254. 10.1111/1365-2656.12558 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 18. Гоулер К.Д., Леон К.Е., Хантер М.Д., де Руд Дж.К. Химические вещества вторичной защиты в молочаях снижают паразитарную инфекцию у бабочек-монархов, Danaus plexippus .Дж. Хим. Экол. 2015; 41: 520–523. 10.1007/s10886-015-0586-6 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 19. де Руд Дж. К., Педерсен А. Б., Хантер М. Д., Альтизер С. Виды растений-хозяев влияют на вирулентность паразитов бабочек-монархов. Дж Аним Экол. 2008; 77: 120–126. 10.1111/j.1365-2656.2007.01305.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 20. Келли, Калифорния, Бауэрс, доктор медицины. Иридоидные гликозиды растений-хозяев опосредуют взаимодействие травоядных с естественными врагами. Экология. 2018; 188: 491–500. 10.1007/s00442-018-4224-1 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 21.Ричардсон Л.Л., Адлер Л.С., Леонард А.С., Андикочеа Дж., Реган К.Х., Энтони В.Е. и другие. Вторичные метаболиты в цветочном нектаре уменьшают паразитарные инфекции у шмелей. Proc Biol Sci. 2015;282:20142471-. 10.1098/рспб.2014.2471 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]22. Энтони В.Е., Палмер-Янг Э.К., Леонард А.С., Ирвин Р.Э., Адлер Л.С. Тестирование дозозависимого воздействия алкалоида нектара анабазина на нагрузку трипаносомных паразитов у взрослых шмелей. ПЛОС ОДИН. 2015;10: e0142496 10.1371/журнал.пон.0142496 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]24. Фоли К., Фацио Г., Дженсен А.Б., Хьюз В.О.Х. Пищевые ограничения и устойчивость к условно-патогенным паразитам Aspergillus у личинок медоносных пчел. J Инвертебр Патол. 2012; 111: 68–73. 10.1016/j.jip.2012.06.006 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 25. Ховик В.М., Лаззаро Б.П. Генотип и диета формируют резистентность и толерантность на разных фазах бактериальной инфекции. БМС Эвол Биол. 2014;14:56 10.1186/1471-2148-14-56 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]26.Nagajyothi F, Weiss LM, Zhao D, Koba W, Jelicks LA, Cui M-H, et al. Диета с высоким содержанием жиров модулирует миокардит, связанный с инфекцией Trypanosoma cruzi . PLoS Negl Trop Dis. 2014;8: e3118 10.1371/journal.pntd.0003118 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]27. Шанкар А.Х., Гентон Б., Семба Р.Д., Байсор М., Пайно Дж., Тамджа С. и др. Влияние добавок витамина А на заболеваемость, вызванную Plasmodium falciparum , у детей раннего возраста в Папуа-Новой Гвинее: рандомизированное исследование. Ланцет.1999; 354: 203–9. 10.1016/С0140-6736(98)08293-2 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 28. Медоуз Д.Н., Бахус Р.Х., Бест А.Ф., Розен Р. Высокое содержание фолиевой кислоты в рационе мышей изменяет иммунный ответ и снижает выживаемость после малярийной инфекции. ПЛОС ОДИН. 2015;10: e0143738 10.1371/journal.pone.0143738 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]29. Кангассало К., Валтонен Т.М., Рофф Д., Пёлкки М., Дубовский И.М., Сорвари Дж. и соавт. Внутри- и межпоколенческое влияние диеты личинок на восприимчивость к энтомопатогенному грибку, Beauveria bassiana , у большой восковой моли, Galleria mellonella .Дж. Эвол Биол. 2015; 28: 1453–1464. 10.1111/jeb.12666 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 30. Уолдор М.К., Тайсон Г., Боренштейн Э., Охман Х., Меллер А., Финлей Б.Б. и др. Что дальше для исследования микробиома? PLoS биол. 2015;13: e1002050 10.1371/journal.pbio.1002050 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]32. Меллер А.Х., Ли И., Мпуди Нголе Э., Ахука-Мундеке С., Лонсдорф Э.В., Пьюзи А.Е. и соавт. Быстрые изменения микробиома кишечника в ходе эволюции человека. Proc Natl Acad Sci. 2014; 111: 16431–16435.10.1073/пнас.1419136111 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]33. Мартинсон В.Г., Дэнфорт Б.Н., Минкли Р.Л., Руппелл О., Тингек С., Моран Н. Простая и самобытная микробиота, связанная с медоносными пчелами и шмелями. Мол Экол. 2011; 20: 619–628. 10.1111/j.1365-294X.2010.04959.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 34. Колман Д.Р., Тулсон Э.К., Такач-Весбах К.Д. Влияют ли диета и таксономия на бактериальные сообщества кишечника насекомых? Мол Экол. 2012;21: 5124–5137. 10.1111/j.1365-294X.2012.05752.Икс [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 35. Warnecke F, Luginbühl P, Ivanova N, Ghassemian M, Richardson TH, Stege JT, et al. Метагеномный и функциональный анализ микробиоты задней кишки высшего термита, питающегося древесиной. Природа. 2007; 450: 560–5. 10.1038/природа06269 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 36. Микаелян А., Дитрих С., Келер Т., Поулсен М., Силлам-Дюссес Д., Брюн А. Диета является основным фактором, определяющим структуру бактериального сообщества в кишечнике высших термитов. Мол Экол. 2015; 24: 5284–95. 10.1111/меч.13376 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 37. Wu GD, Chen J, Hoffmann C, Bittinger K, Chen YY, Keilbaugh SA, et al. Связь долгосрочных моделей питания с кишечными микробными энтеротипами. Наука. 2011; 334: 105–8. 10.1126/наука.1208344 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]38. Дэвид Л.А., Морис С.Ф., Кармоди Р.Н., Гутенберг Д.Б., Баттон Дж.Е., Вулф Б.Е. и др. Диета быстро и воспроизводимо изменяет микробиом кишечника человека. Природа. 2014; 505: 559–63. 10.1038/природа12820 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]39.Tarayre C, Bauwens J, Mattéotti C, Brasseur C, Millet C, Massart S, et al. Множественные анализы микробных сообществ, примененных к кишечнику питающегося древесиной термита Reticulitermes flavipes , питавшегося искусственными диетами. Симбиоз. 2015; 65: 143–155. 10.1007/s13199-015-0328-0 [CrossRef] [Google Scholar]40. Дэвид Л.А., Матерна А.С., Фридман Дж., Кампос-Баптиста М.И., Блэкберн М.С., Перротта А. и др. Образ жизни хозяина влияет на микробиоту человека в ежедневных временных масштабах. Геном биол. 2014;15: 89 р. 10.1186/ru-2014-15-7-r89 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]41.Faith JJ, Guruge JL, Charbonneau M, Subramanian S, Seedorf H, Goodman AL, et al. Долгосрочная стабильность микробиоты кишечника человека. Наука. 2013;341:1237439 10.1126/наука.1237439 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]42. Арумугам М., Раес Дж., Пеллетье Э., Ле Паслье Д., Ямада Т., Менде Д.Р. и др. Энтеротипы микробиома кишечника человека. Природа. 2011; 473: 174–80. 10.1038/природа09944 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]43. Классон М.Дж., Джеффри И.Б., Конде С., Пауэр С.Е., О’Коннор Э.М., Кьюсак С. и др.Состав кишечной микробиоты коррелирует с диетой и здоровьем пожилых людей. 2012 г.; 10.1038/природа11319 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]44. Turnbaugh PJ, Ridaura VK, Faith JJ, Rey FE, Knight R, Gordon JI. Влияние диеты на микробиом кишечника человека: метагеномный анализ на гуманизированных гнотобиотических мышах. Sci Transl Med. 2009;1:6ра14 10.1126/научн.мед.3000322 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]45. Де Филиппо С., Кавальери Д., Ди Паола М., Рамазотти М., Пулле Дж. Б., Массарт С. и др.Влияние диеты на формирование микробиоты кишечника, выявленное сравнительным исследованием детей из Европы и сельских районов Африки. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010;107: 14691–14696. 10.1073/пнас.1005963107 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]46. Мияке С., Нгуги Д.К., Стингл У. Диета сильно влияет на микробиоту кишечника рыб-хирургов. Мол Экол. 2014; 10.1111/меч.13050 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]47. Пинто-Томас А., Ситтенфельд А., Урибе-Лорио Л., Чаваррия Ф., Мора М., Янцен Д.Х. и др. Сравнение бактериального разнообразия средней кишки тропических гусениц (Lepidoptera: Saturniidae), питающихся разными диетами.Окружающая среда Энтомол. 2011; 40: 1111–1122. 10.1603/EN11083 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]48. Кишидайова С., Варадьева З., Присташ П., Пикнова М., Нигутова К., Петржелкова К.Ю. и др. Влияние диет с высоким и низким содержанием клетчатки на фекальную ферментацию и фекальные микробные популяции шимпанзе, содержащихся в неволе. Am J Приматол. 2009; 71: 548–557. 10.1002/ajp.20687 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]49. Wang Y, Gilbreath TM, Kukutla P, Yan G, Xu J. Динамический микробиом кишечника на протяжении всей истории жизни малярийного комара Anopheles gambiae в Кении.ПЛОС ОДИН. 2011;6: e24767 10.1371/journal.pone.0024767 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]50. Гибсон Г.Р., Роберфройд М.Б. Диетическая модуляция микробиоты толстой кишки человека: введение в концепцию пребиотиков. Дж Нутр. 1995; 125: 1401–1412. 10.1093/ин/125.6.1401 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]51. Роберфройд М., Гибсон Г.Р., Хойлс Л., Маккартни А.Л., Растолл Р., Роуленд И. и др. Эффекты пребиотиков: польза для обмена веществ и здоровья. Бр Дж Нутр. 2010; 104: С1–С63. 10.1017/S0007114510003363 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]52.Гибсон ГР. Диетическая модуляция микрофлоры кишечника человека с использованием пребиотиков олигофруктозы и инулина. Дж Нутр. 1999; 129: 1438С–1441С. 10.1093/Джн/129.7.1438С [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]53. Йованович-Малиновска Р., Кузманова С., Винкельхаузен Э. Профиль олигосахаридов во фруктах и ​​овощах как источниках пребиотиков и функциональных пищевых продуктов. Int J Food Prop. 2014; 17: 949–965. 10.1080/10942912.2012.680221 [CrossRef] [Google Scholar]54. Клессен Б., Шварц С., Бём А., Фурманн Х., Рихтер А., Хенле Т. и др.Топинамбур и инулин из цикория в хлебобулочных изделиях влияют на фекальную микробиоту здоровых добровольцев. Бр Дж Нутр. 2007;98: 540 10.1017/S0007114507730751 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]55. Туохи К.М., Колида С., Лустенбергер А.М., Гибсон Г.Р. Пребиотические эффекты печенья, содержащего частично гидролизованную гуаровую камедь и фруктоолигосахариды — исследование на добровольцах. Бр Дж Нутр. 2001; 86: 341 10.1079/bjn2001394 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]56. Али С.М., Абдель-Галил Ахмед Ю., Абдель-Азиз Гариб А., Мохамед М.Ф.Исследования Bacillus subtilis и Lactobacillus acidophilus в качестве потенциальных пробиотиков на иммунный ответ и устойчивость Tilapia nilotica ( Oreochromis niloticus ) к инфекциям. Иммунол рыбных моллюсков. 2008; 25: 128–136. 10.1016/j.fsi.2008.03.013 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]57. Boger MCL, Lammerts van Bueren A, Dijkhuizen L. Перекрестное кормление пробиотических бактериальных штаммов пребиотическим инулином включает внеклеточную экзо -инулиназу Lactobacillus paracasei , штамм W20.Appl Environ Microbiol. 2018;84 10.1128/АЭМ.01539-18 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]58. Сазавал С., Хиремат Г., Дингра У., Малик П., Деб С., Блэк Р.Э. Эффективность пробиотиков в профилактике острой диареи: метаанализ замаскированных рандомизированных плацебо-контролируемых исследований. Ланцет Infect Dis. 2006; 6: 374–382. 10.1016/С1473-3099(06)70495-9 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]59. Falagas ME, Betsi GI, Athanasiou S. Пробиотики для лечения женщин с бактериальным вагинозом.Клин Микробиол Инфект. 2007; 13: 657–664. 10.1111/j.1469-0691.2007.01688.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 60. Li Y, Liu H, Dai X, Li J, Ding F. Влияние диетического инулина и маннанового олигосахарида на экспрессию генов, связанных с иммунитетом, и устойчивость к болезням тихоокеанской белой креветки, Litopenaeus vannamei . Иммунол рыбных моллюсков. 2018;76: 78–92. 10.1016/j.fsi.2018.02.034 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 61. Эль Хури С., Руссо А., Лекёр А., Шеиб Б., Буслама С., Мерсье П.-Л. и др.Вредоносное взаимодействие между медоносными пчелами ( Apis mellifera ) и их микроспоридиями внутриклеточного паразита Nosema ceranae было смягчено введением либо эндогенных, либо аллохтонных штаммов кишечной микробиоты. Фронт Экол Эвол. 2018;6 10.3389/fevo.2018.00058 [CrossRef] [Google Scholar]62. Piazzon MC, Calduch-Giner JA, Fouz B, Estensoro I, Simó-Mirabet P, Puyalto M, et al. Под контролем: как пищевая добавка может восстановить микробиом кишечника и протеомный профиль, а также повысить устойчивость к болезням у морских костистых рыб, питающихся растительной пищей.Микробиом. 2017;5:164 10.1186/с40168-017-0390-3 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]64. Пернис М., Симпсон С.Дж., Понтон Ф. На пути к комплексному пониманию микробиоты кишечника с использованием насекомых в качестве модельных систем. Дж. Физиология насекомых. 2014; 69: 12–18. 10.1016/j.jinsphys.2014.05.016 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 65. Энгель П., Моран Н. Микробиота кишечника насекомых – разнообразие структуры и функций. FEMS Microbiol Rev. 2013; 37: 699–735. 10.1111/1574-6976.12025 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]66.Диллон Р.Дж., Диллон В.М. Кишечные бактерии насекомых: непатогенные взаимодействия. Анну Рев Энтомол. 2004; 49: 71–92. 10.1146/annurev.ento.49.061802.123416 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]67. Лей Р.Э., Бекхед Ф., Тернбо П., Лозупоне К.А., Найт Р.Д., Гордон Дж.И. Ожирение изменяет микробную экологию кишечника. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005; 102: 11070–5. 10.1073/пнас.0504978102 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]68. Hildebrandt MA, Hoffmann C, Sherrill-Mix SA, Keilbaugh SA, Hamady M, Chen YY, et al.Диета с высоким содержанием жиров определяет состав микробиома кишечника мышей независимо от ожирения. Гастроэнтерология. 2009; 137: 1716–24.e1–2. 10.1053/ж.гастро.2009.08.042 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]69. Чендлер Дж. А., Ланг Дж., Бхатнагар С., Эйзен Дж. А., Копп А. Бактериальные сообщества различных видов дрозофил : экологический контекст модельной системы хозяин-микроб. Генетика PLoS. 2011;7 10.1371/журнал.pgen.1002272 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]70.Vacchini V, Gonella E, Crotti E, Prosdocimi EM, Mazzetto F, Chouaia B, et al. Сдвиг бактериального разнообразия, обусловленный различным питанием в кишечнике пятнистой мухи Drosophila suzukii , в первую очередь отражается на уксуснокислых бактериях. Environ Microbiol Rep. 2017; 9: 91–103. 10.1111/1758-2229.12505 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]72. Вонг CNA, Ng P, Дуглас AE. Бактериальное сообщество с низким разнообразием в кишечнике плодовой мушки Drosophila melanogaster . Окружающая среда микробиол.2011; 13: 1889–900. 10.1111/j.1462-2920.2011.02511.x [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]73. Шарон Г., Сегал Д., Ринго Дж. М., Хефец А., Зильбер-Розенберг И., Розенберг Э. Комменсальные бактерии играют роль в спаривании Drosophila melanogaster . Proc Natl Acad Sci. 2010; 107: 20051–20056. 10.1073/пнас.10097 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]74. Fink C, Staubach F, Kuenzel S, Baines JF, Roeder T. Неинвазивный анализ динамики микробиома плодовой мушки Drosophila melanogaster .Appl Environ Microbiol. 2013;79: 6984–6988. 10.1128/АЭМ.01903-13 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]75. Billiet A, Meeus I, Van Nieuwerburgh F, Deforce D, Wäckers F, Smaghe G. Влияние сахарного сиропа и диеты с пыльцой на бактериальное разнообразие в кишечнике шмелей, выращиваемых в помещении ( Bombus terrestris ). Апидология. 2016; 47: 548–560. 10.1007/s13592-015-0399-1 [CrossRef] [Google Scholar]76. Staudacher H, Kaltenpoth M, Breeuwer JAJ, Menken SBJ, Heckel DG, Groot AT. Изменчивость бактериальных сообществ у бабочки Heliothis virescens указывает на временную связь с хозяином.ПЛОС ОДИН. 2016;11: e0154514 10.1371/журн.pone.0154514 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]77. Белда Э., Педрола Л., Перето Х., Мартинес-Бланч Х.Ф., Монтагуд А., Наварро Э. и др. Микробное разнообразие в средней кишке полевых и лабораторных популяций европейского кукурузного мотылька Ostrinia nubilalis . ПЛОС ОДИН. 2011;6 10.1371/journal.pone.0021751 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]78. Прия Н.Г., Оджха А., Кайла М.К., Радж А., Раджагопал Р. Изменчивость кишечных бактерий Helicoverpa armigera , вызванная растением-хозяином.ПЛОС ОДИН. 2012;7: e30768 10.1371/journal.pone.0030768 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]79. Робинсон С.Дж., Шлосс П., Рамос Ю., Раффа К., Хандельсман Дж. Устойчивость бактериального сообщества в средней кишке личинок капустной белокочанной бабочки. Микроб Экол. 2010; 59: 199–211. 10.1007/s00248-009-9595-8 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]80. Бродерик Н.А., Раффа К.Ф., Гудман Р.М., Хандельсман Дж. Перепись бактериального сообщества средней кишки личинок непарного шелкопряда с использованием культивирования и независимых от культивирования методов.Appl Environ Microbiol. 2004; 70: 293–300. 10.1128/АЭМ.70.1.293-300.2004 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]81. Оливер К.М., Рассел Дж.А., Моран Н.А., Хантер М.С. Факультативные бактериальные симбионты у тлей придают устойчивость к осам-паразитам. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003; 100: 1803–1807. 10.1073/пнас.0335320100 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]82. Скарборо CL, Ferrari J, Годфрей HCJ. Тля защищена от возбудителя эндосимбионтом. Наука. 2005;310:1781 10.1126/наук.1120180 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]83. Kaltenpoth M, Göttler W, Herzner G, Strohm E. Симбиотические бактерии защищают личинок ос от грибкового заражения. Карр Биол. 2005; 15: 475–479. 10.1016/j.cub.2004.12.084 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]84. Kroiss J, Kaltenpoth M, Schneider B, Schwinger MG, Hertweck C, Maddula RK, et al. Симбиотические стрептомицеты обеспечивают комбинированную профилактику антибиотиков для потомства ос. Nat Chem Biol. 2010;6: 261–263. 10.1038/нчембио.331 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]85.Brucker RM, Harris RN, Schwantes CR, Gallaher TN, Flaherty DC, Lam BA, et al. Химическая защита земноводных: противогрибковые метаболиты микросимбионта Janthinobacterium lividum на саламандре Plethodon cinereus . Дж. Хим. Экол. 2008; 34: 1422–1429. 10.1007/s10886-008-9555-7 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]86. Сильверман М.С., Дэвис И., Пиллаи Д.Р. Успех самостоятельной трансплантации кала в домашних условиях при хронической инфекции Clostridium difficile . Клин Гастроэнтерол Гепатол.2010;8: 471–473. 10.1016/j.cgh.2010.01.007 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]87. Брандт Л.Дж., Арониадис О.К., Меллоу М., Канатзар А., Келли С., Парк Т. и др. Долгосрочное наблюдение за колоноскопической трансплантацией фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile . Am J Гастроэнтерол. 2012; 107: 1079–1087. 10.1038/ажг.2012.60 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]88. Янгстер И., Саук Дж., Пиндар С., Уилсон Р.Г., Каплан Дж.Л., Смит М.Б. и др. Трансплантация фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile с использованием замороженного инокулята от неродственных доноров: рандомизированное открытое контролируемое пилотное исследование.Клин Инфекция Дис. 2014;58: 1515–1522. 10.1093/сид/сиу135 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]89. Хенсли-МакБейн Т., Зевин А.С., Манузак Дж., Смит Э., Джайл Дж., Миллер С. и соавт. Влияние фекальной микробной трансплантации на микробиом и иммунитет макак, инфицированных вирусом иммунодефицита обезьян. Дж Вирол. 2016; 90: 4981–4989. 10.1128/ОВИ.00099-16 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]90. Кох Х., Шмид-Хемпель П. Микробиота кишечника, передающаяся социальным путем, защищает шмелей от кишечных паразитов.Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108: 19288–92. 10.1073/пнас.1110474108 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]91. Палмер-Янг EC, Raffel TR, McFrederick QS. pH-опосредованное ингибирование паразита шмелей кишечным симбионтом. Паразитология. 2019; 146: 380–388. 10.1017/S0031182018001555 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]92. Forsgren E, Olofsson TC, Vásquez A, Fries I. Новые молочнокислые бактерии ингибируют личинок Paenibacillus в личинках медоносных пчел.Апидология. 2009; 41: 99–108. 10.1051/apido/2009065 [CrossRef] [Google Scholar]93. Эванс Д.Д., Армстронг Т.Н. Ингибирование американской бактерии гнильца, Paenibacillus larvae larvae , бактериями, выделенными из медоносных пчел. Дж Апик Рез. 2005; 44: 168–171. 10.1080/00218839.2005.11101173 [CrossRef] [Google Scholar]94. Йошияма М., Кимура К. Бактерии в кишечнике японской медоносной пчелы, Apis cerana japonica , и их антагонистический эффект против личинок Paenibacillus , возбудителя американского гнильца.J Инвертебр Патол. 2009; 102: 91–96. 10.1016/j.jip.2009.07.005 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]95. Диллон Р.Дж., Веннард К.Т., Баклинг А., Чарнли А.К. Разнообразие кишечных бактерий саранчи защищает от инвазии патогенов. Эколь Летт. 2005; 8: 1291–1298. 10.1111/j.1461-0248.2005.00828.x [CrossRef] [Google Scholar]96. Кешнерова Л., Марс РАТ, Эллегаард К.М., Тройло М., Зауэр У., Энгель П. Распутывание метаболических функций бактерий в кишечнике медоносной пчелы. PLoS биол. 2017;15: e2003467 10.1371/journal.pbio.2003467 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]97.Хайнц-Бушхарт А., Уилмес П. Микробиом кишечника человека: функция имеет значение. Тенденции микробиол. 2018; 26: 563–574. 10.1016/j.tim.2017.11.002 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]98. Каррара Ф., Джометто А., Сеймур М., Ринальдо А., Альтерматт Ф. Экспериментальные доказательства сильных стабилизирующих сил при высоком функциональном разнообразии водных микробных сообществ. Экология. 2015; 96: 1340–1350. 10.1890/14-1324.1 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]99. Мойя А., Феррер М. Стабильность микробиоты кишечника, вызванная функциональной избыточностью, подвергается нарушению.Тенденции микробиол. 2016; 24: 402–413. 10.1016/j.tim.2016.02.002 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 100. Ван Хук MJA, Меркс RMH. Возникновение микробного разнообразия из-за взаимодействий перекрестного питания в пространственной модели микробного метаболизма кишечника. BMC Сист Биол. 2017;11:56 10.1186/с12918-017-0430-4 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]101. Yooseph S, Kirkness EF, Tran TM, Harkins DM, Jones MB, Torralba MG, et al. Состав микробиоты стула связан с предполагаемым риском заражения Plasmodium falciparum .2011 г.; 10.1186/s12864-015-1819-3 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]102. Мортон Э.Р., Линч Дж., Фромент А., Лафосс С., Хейер Э., Пшеворски М. и соавт. Различия в кишечной микробиоте сельских районов Африки тесно связаны с колонизацией Entamoeba и существованием. Генетика PLoS. 2015;11: e1005658 10.1371/журнал.pgen.1005658 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]103. Буасьер А., Чиоффо М.Т., Бачар Д., Абате Л., Мари А., Нсанго С.Е. и др. Микробиота средней кишки малярийного комара-переносчика Anopheles gambiae и взаимодействие с инфекцией Plasmodium falciparum .PLoS Патог. 2012;8: e1002742 10.1371/журнал.ppat.1002742 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]104. Рамирес Дж. Л., Шорт С. М., Баия А. С., Сарайва Р. Г., Донг И., Канг С. и др. Chromobacterium Csp_P снижает малярию и лихорадку денге у комаров-переносчиков и обладает энтомопатогенной и in vitro антипатогенной активностью. PLoS Патог. 2014;10: e1004398 10.1371/журнал.ppat.1004398 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]105. Yilmaz B, Portugal S, Tran TM, Gozzelino R, Ramos S, Gomes J, et al.Микробиота кишечника вызывает защитный иммунный ответ против передачи малярии. Клетка. 2014; 159: 1277–1289. 10.1016/j.cell.2014.10.053 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]106. Фаннинг С., Холл Л.Дж., Кронин М., Зомер А., МакШарри Дж., Гулдинг Д. и др. Бифидобактериальный поверхностный экзополисахарид способствует взаимодействию комменсал-хозяин посредством иммуномодуляции и защиты от патогенов. Proc Natl Acad Sci USA. 2012; 109: 2108–2113. 10.1073/пнас.1115621109 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]107.Моклер Б.К., Квонг В.К., Моран Н.А., Кох Х. Структура микробиома влияет на заражение шмелями паразитом Crithidia bombi . Appl Environ Microbiol. 2018; АЭМ.02335-17. 10.1128/АЭМ.02335-17 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]108. Johnston PR, Rolff J. Host и симбионт совместно контролируют микробиоту кишечника во время полной метаморфозы. PLoS Патог. 2015;11: e1005246 10.1371/журнал.ppat.1005246 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]109. Caccia S, Di Lelio I, La Storia A, Marinelli A, Varricchio P, Franzetti E и др.Микробиота средней кишки и иммунокомпетентность хозяина лежат в основе механизма уничтожения Bacillus thuringiensis . Proc Natl Acad Sci USA. 2016; 113: 9486–9491. 10.1073/пнас.1521741113 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]111. Ханаге ВП. Наука о микробиоме нуждается в здоровой дозе скептицизма. Природа. 2014; 512: 247–248. 10.1038/512247а [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 112. Тросвик П., де Муинк Э.Дж., Стенсет Н.К. Биотические взаимодействия и временная динамика микробиоты желудочно-кишечного тракта человека.ISME J. 2014; 9: 533–541. 10.1038/исмей.2014.147 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]113. Мазманян С.К., Раунд Ю.Л., Каспер Д.Л. Фактор микробного симбиоза предотвращает воспалительные заболевания кишечника. Природа. 2008; 453: 620–5. 10.1038/природа07008 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 114. Фейт Дж.Дж., Коломбель Дж.Ф., Гордон Дж.И. Выявление штаммов, способствующих развитию сложных заболеваний, путем изучения микробного наследования. Proc Natl Acad Sci USA. 2015;112:201418781 10.1073/пнас.1418781112 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]115.Гринблюм С., Карр Р., Боренштейн Э. Обширные вариации числа копий на уровне штамма среди видов кишечного микробиома человека. Клетка. 2015; 160: 583–594. 10.1016/j.cell.2014.12.038 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]117. Шарон И., Моровиц М.Дж., Томас Б.К., Костелло Э.К., Релман Д.А., Бэнфилд Дж.Ф. Анализ геномики сообщества временных рядов выявляет быстрые сдвиги в бактериальных видах, штаммах и фагах во время колонизации кишечника младенцев. Геном Res. 2013; 23: 111–20. 10.1101/гр.142315.112 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]118.Жернакова А., Курильщиков А., Бондер М.Дж., Тигчелаар Э.Ф., Ширмер М., Ватанен Т. и соавт. Популяционный метагеномный анализ выявляет маркеры состава и разнообразия кишечного микробиома. Наука. 2016; 352: 565–569. 10.1126/наука.aad3369 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]119. Раубенхаймер Д., Симпсон С.Дж. Пищевая фармэкология: дозы, питательные вещества, токсины и лекарства. Интегр Комп Биол. 2009; 49: 329–337. 10.1093/icb/icp050 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

стероидов и диета лучше всего подходят для лечения ВЗК собак

Автор Arden Moore

Воспалительные заболевания кишечника у собак по-прежнему остаются одним из самых сложных состояний для лечения ветеринаров.Лекарство от этого болезненного хронического желудочно-кишечного заболевания остается недостижимым, но план лечения, сочетающий синтетический стероид будесонид с новой белковой или гидролизованной диетой, пользуется поддержкой ведущих ветеринарных специалистов в области внутренних болезней и питания.

Собаки, страдающие ВЗК, могут демонстрировать такие признаки, как хроническая или повторяющаяся рвота, жидкий стул, потеря аппетита, вялость, субфебрильная температура, плохое качество шерсти и потеря веса — признаки, которые могут присутствовать при других заболеваниях, что делает диагностику ВЗК сложнее.Эти собаки обычно имеют воспаление слизистой оболочки желудка, толстой и тонкой кишки. Их иммунная система ведет войну с вторжением бактериальных, пищевых или паразитарных антигенов. Они несчастны и испытывают боль, а их владельцы часто расстраиваются из-за отсутствия быстрой диагностики и выздоровления.

«Мы до сих пор мало что знаем об этом заболевании, но мы находим более эффективные способы его лечения», — говорит Джозеф Вакшлаг, DVM, доктор философии, доцент кафедры клинического питания Колледжа ветеринарной медицины Корнельского университета в Итаке. , Н.Y. «Мы склонны выявлять ВЗК, исключая другие возможные причины, такие как паразиты и рак. Мы возвращаемся к диагностике ВЗК».

Основные типы ВЗК, поражающие собак, включают:
Лимфоцитарно-плазмоцитарный энтероколит. Считается наиболее распространенным типом ВЗК, его выявляют с помощью биопсии, которая подтверждает избыточное количество лимфоцитов и плазматических клеток на стенке толстой или тонкой кишки.

Эозинофильный энтероколит: Этот сложный тип ВЗК определяется по наличию эозинофилов (небольших палочковидных лейкоцитов в костном мозге, которые контролируют аллергические и воспалительные реакции), присутствующих в толстой кишке, тонкой кишке или желудке собаки.

Гранулематозный энтерит: биопсия необходима для выявления этого редкого типа ВЗК и исключения других возможных заболеваний, таких как гистоплазмоз или грибковое заболевание. Этот тип характеризуется воспалением, которое вызывает сужение тонкой кишки.

Фредерик Дразнер, доктор ветеринарной медицины, дипл. ACVIM, соруководитель ветеринарной больницы Райт/специализированных служб животных округа Кук в Дес-Плейнс, штат Иллинойс, говорит, что для ветеринаров жизненно важно подтвердить ВЗК, собрав подробную историю болезни.

«Для выяснения частоты, постоянства и характера дефекации необходимо собрать подробный анамнез, — говорит он. — Спросите клиента: «Как долго продолжаются симптомы?» Какие терапевтические/диетические меры применялись в прошлом? Что ест собака?»

Выявление ВЗК как причины также требует тщательного медицинского осмотра и проведения ряда диагностических тестов, которые могут включать:
* Исследование кала на возможное присутствие паразитарного или бактериального агента
* Рентген брюшной полости и, возможно, ультразвуковое исследование
* Общий анализ крови
* Биохимический анализ сыворотки

Но его любимый диагностический инструмент — эндоскоп.

Доктор Дразнер провел более 800 эндоскопических операций на животных под общей анестезией. Осциллограф, подключенный к источнику света, камере и компьютерному монитору, позволяет ветеринару брать образцы биопсии и исследовать состояние толстой кишки, желудка или тонкой кишки собаки, чтобы обнаружить опухоль, кровотечение или наличие язв или инородных тел.

«Мой совет — практиковаться, практиковаться и еще раз практиковаться в проведении волоконно-оптических обследований, — говорит Дразнер. — Эндоскопическое оборудование значительно улучшилось за последние годы.Гастроскопические, эндоскопические и колоноскопические исследования, проводимые опытным квалифицированным оператором, могут предоставить бесценную гистопатологическую информацию с минимальным стрессом для пациента».

После постановки диагноза ВЗК Вакшлаг рекомендует постепенно менять диету собаки, если основными белками были обычные, такие как говядина, курица или баранина. Затем собаку будут кормить новой белковой или гидролизованной диетой. Ветеринар работает с клиентом, чтобы ввести конкретный белок, который собака никогда не потребляла, например, белок бизона, кенгуру или кролика.

Породы, подверженные риску ВЗК
У любой собаки любого возраста может развиться воспалительное заболевание кишечника; однако некоторые породы подвергаются большему риску, особенно норвежские лундехунды, по словам Джозефа Вакшлага, DVM, доктора философии, доцента клинического питания в Колледже ветеринарной медицины Корнельского университета.
Также в списке группы риска:
* Басенджи
* Боксеры
* Английские бульдоги
* Немецкие овчарки
* Ирландские сеттеры
* Ротвейлеры
* Шарпеи
* Пшеничные терьеры

Изменение диеты

Второй вариант — диета с гидролизованным белком.Они продаются непосредственно ветеринарам и состоят из крошечных белковых частиц, которые слишком малы, чтобы их можно было обнаружить или вызвать реакцию иммунной системы собаки.

Цель диетического подхода — успокоить иммунную систему, которая слишком долго работала над борьбой с аллергенами, и дать воспаленному болезненному желудочно-кишечному тракту время на выздоровление.

«Люди часто сначала пробуют новый подход к кормлению, потому что это легко, — говорит Вакшлаг. — Если вы посадите свою собаку на новую белковую или гидролизованную диету, и все станет лучше, тогда задача состоит в том, чтобы постепенно снова вводить старые корма. один за раз.Когда диарея и рвота вернутся, вы разобрались с проблемой».

Циклоспорин

В некоторых случаях назначают циклоспорин, иммунодепрессант, предназначенный для уменьшения воспаления в пищеварительном тракте, и азатиоприн, препарат, подавляющий лимфоциты, проникающие в желудочно-кишечный тракт. Также могут быть оправданы лекарства против тошноты и антациды.

Вакшлаг говорит, что преднизолон был предпочтительным синтетическим стероидом для защиты слизистой оболочки кишечника собаки, облегчения расстройства пищеварения и восстановления здорового аппетита у пораженных собак.Это относительно недорого, но он считает, что будесонид при местном применении дает меньше побочных эффектов.

«В Корнелле мы часто получаем самые тяжелые случаи собак с ВЗК, — говорит он. — Нам нужно выводить агрессивные дозы сильнодействующих препаратов для борьбы с ВЗК. Собаки с ВЗК чувствуют себя несчастными, но при правильном плане лечения большинство из них могут получить приемлемый результат».

Движение вперед

Дразнер считает, что в будущем иммунодепрессанты, такие как Селлсепт, будут более широко использоваться для борьбы с ВЗК у собак.

«Генная терапия — это будущее лечения множества хронических аутоиммунных заболеваний, таких как ВЗК, диабет и артрит, — говорит Дразнер. Я использовал его на четырех собаках — золотистом ретривере, спрингер-спаниеле, британском спаниеле и йоркширском терьере, и это улучшило качество их жизни.

«Но нужно быть очень осторожным при использовании Селлсепта, потому что он очень сильнодействующий. Некоторые ветеринары обращаются к Селлсепту для собак с ВЗК, которые не реагируют на преднизолон, азатиоприн или циклоспорин.

<ДОМ>

ADW: Ancylostoma duodenale: ИНФОРМАЦИЯ

Географический диапазон

Анкилостомы человека встречаются в тропических и субтропических регионах между 30° к северу и югу от экватора. Ancylostoma duodenale встречается в Средиземноморье, Юго-Восточной Азии и разбросана по Южной Америке. (Бейгал и др., 2000; Чанхуа и др., 1999; Робертс и Янови мл., 2000)

Среда обитания

Наряду с диапазоном окончательных хозяев Ancylostoma duodenale также имеет ряд паратенических хозяев псовых и кошачьих, где она может оставаться в течение определенных интервалов времени, пока не достигнет окончательного хозяина.У паратенического хозяина он может выживать в мышцах, откуда затем передается человеку через недоваренное мясо, включая кролика, баранину, говядину и свинину. Яйца Ancylostoma duodenale все еще находятся внутри мышц и проглатываются вместе с мясом, что позволяет взрослым особям развиваться в кишечном тракте.

Молодь этого вида обитает в более теплых регионах мира, где почва предпочтительно гумусная и рыхлая, с достаточным дренажем воды и хорошей аэрацией.Кислород необходим для развития яиц, метаболизм которых является аэробным.

Яйца анкилостомы получают питание из фекалий хозяина путем всасывания. Поэтому они должны жить в районах с почвами с нейтральным pH и в тенистых местах, таких как кофейные, банановые и сахарные плантации, где фекалии остаются нетронутыми достаточно долго, чтобы они могли развиться в молодь. Они чрезвычайно чувствительны к солнечному свету, что в конечном итоге может убить молодь. Молодь также чувствительна к высоким концентрациям солей и кислому pH почвы.

После проникновения через кожу молодые особи прикрепляются к кровеносным сосудам и начинают питаться, пока не достигнут взрослой стадии. Взрослые самки остаются привязанными, а самцы отделяются, чтобы найти себе пару. Постоянному повторному заражению способствует повторная дефекация инфицированных людей в тех же местах, где они были первоначально инфицированы. Это может даже привести к эпидемиям инфекций Ancylostoma duodenale в засушливых регионах мира. (Чилтон и Гассер, 1999; Робертс и Янови-мл., 2000)

Физическое описание

Ancylostoma duodenale представляет собой червь S-образной формы из-за его изгиба на переднем конце. Червь розовато-белый. Взрослые самцы анкилостомы имеют размер от 8 до 11 мм в длину, тогда как взрослые самки имеют размер от 10 до 13 мм в длину. Этот вид диморфен, самцы имеют характеристики бурсы и игольчатые спикулы с маленькими кончиками, сросшиеся дистально. У самок вульва расположена примерно на одной трети длины тела от заднего конца.И самцы, и самки анкилостомы имеют два мощных вентральных зуба у взрослых форм паразита, по одному с каждой стороны буккальной капсулы; более мелкие пары зубцов расположены глубже в капсуле.

Яйца анкилостомы имеют тонкую скорлупу, а личинки обладают амфиды, большие парные сенсиллы по бокам рта, которые позволяют им определить местонахождение своего хозяина. Личинки имеют палочковидную форму и длину около 0,004 см. (Эштон и др., 1999; Карсон-ДеВитт, 1999; Д.У., 1980; Робертс и Янови-младший, 2000 г .; Уильямс, 1969)

  • самка крупнее
  • полы имеют разную форму
  • Длина диапазона
    от 8 до 13 мм
    от 0,31 до 0,51 дюйма

Разработка

Жизненный цикл анкилостомы состоит из семи следующих этапов.Сначала яйца Ancylostoma duodenale попадают в фекалии хозяина. Во-вторых, эмбрион проходит и развивается в фекалиях. Затем рабдитоформная ювенильная стадия первой стадии вылупляется, когда яйцо находится вне хозяина. Затем после двух линек развивается филяриформная или инвазионная молодь. Эта стадия характеризуется остановкой развития до тех пор, пока не будет достигнут новый хозяин. Люди могут заразиться через ротовую полость при употреблении недоваренного мяса. Нитевидные ювенильные особи заражают путем прямого проникновения через кожу хозяина, обычно человека.В-пятых, молодые особи затем мигрируют по кровеносной системе, пока не достигают легких. В-шестых, достигнув легких, молодые особи покидают кровеносную систему, попадая в альвеолы, а затем мигрируя в тонкий кишечник через трахею. Нематодам требуется около 5-6 недель, чтобы добраться до тонкой кишки из легких. Наконец, взрослые черви развиваются в тонком кишечнике, где они спариваются, и производят яйца, которые отправляются с фекалиями хозяина, чтобы снова начать процесс.Взрослые особи формируются примерно через 6 недель после первоначального заражения.

Возможный альтернативный корень инфекции может возникнуть, если молодые особи проглочены и развиваются нормально, не попадая в легкие. Однако это очень редкое явление. (Beigal, et al., 2000; D.W., 1980; Roberts and Janovy Jr., 2000)

Репродукция

И самцы, и самки прикрепляются к стенкам кишечника на протяжении всей жизни, но самец в какой-то момент уходит в поисках самки для спаривания.Средняя продолжительность жизни самки составляет около одного года, в течение которого она может откладывать от 10 000 до 30 000 яиц в день во взрослой жизни.

Самки могут производить феромон для привлечения самцов. Мужчина обвивается вокруг самки своим изогнутым участком над половым отверстием самки. Губернакулум, состоящий из ткани кутикулы, направляет спикулы, которые проходят через клоаку и задний проход. Самцы используют спикулы, чтобы удерживать самку во время совокупления. Сперматозоиды нематод имеют амебоидную форму и лишены жгутиков.(Барнс, 1987; Бейгал и др., 2000; Д.В., 1980; Робертс и Янови мл., 2000)

Нет никаких родительских вложений, кроме яйцекладки.

Поведение

Ювенильные стадии паразита перемещаются во внешней среде до обнаружения хозяина. Взрослые черви могут перемещаться из одного места в другое по кишечнику, попав внутрь хозяина, что увеличивает кровопотерю через раны, оставшиеся на слизистой оболочке кишечника.

Личинки инвазионной стадии обычно неподвижны, пока не почувствуют колебания почвы в виде тепла или углекислого газа. Они используют сигналы окружающей среды, чтобы пометить своего хозяина и подготовиться к проглатыванию на третьей личиночной стадии. Они делают это, используя нейроны с дендритными отростками, которые напоминают реснички, которые являются механосенсорными, термосенсорными и хемосенсорными. Взрослые человеческие анкилостомы перемещаются, перетекая в кровотоке от одного места к другому, а затем прикрепляются к стенкам кишечника, где они питаются.(Эштон и др., 1999; Робертс и Янови-мл., 2000; Уильямс, 1969)

Общение и восприятие

Личинки инвазионной стадии обычно неподвижны, пока не почувствуют колебания почвы в виде тепла или углекислого газа. Они используют сигналы окружающей среды, чтобы пометить своего хозяина и подготовиться к проглатыванию на третьей личиночной стадии. Они делают это, используя нейроны с дендритными отростками, которые напоминают реснички, которые являются механосенсорными, термосенсорными и хемосенсорными.(Эштон и др., 1999; Робертс и Янови-мл., 2000; Уильямс, 1969)

Пищевые привычки

Окончательный хозяин – место, где паразит достигает половой зрелости. Люди являются окончательными хозяевами Ancylostoma duodenale. Недавние исследования показывают, что другие окончательные хозяева могут существовать из-за способности перекрестно заражать разные носители. Например, Ancylostoma duodenale обладает способностью к перекрестной инфекции от людей к собакам, тогда как ее близкий родственник, Ancylostoma caninum, не может заражать людей.

Яйца анкилостомы питаются через фекалии хозяина. Проникнув в кожу, мальки прикрепляются к кровеносным сосудам и начинают питаться.

Личиночная стадия является свободноживущей при самостоятельном существовании в почве. Затем они проникают в кожу хозяина за счет секреции пищеварительных ферментов, растворяющих кожу.

Молодые и взрослые черви питаются кровью из стенок кишечника хозяина, прикрепляясь к слизистой оболочке кишечника своими острыми щечными зубами, которыми они также разрывают мелкие кровеносные сосуды, чтобы высасывать из них кровь.Ancylostoma duodenale обладают антикоагулянтными веществами, которые выделяются для предотвращения свертывания крови в кровь, вытекающую из раны. (Бринксворт и др., 2000; Чилтон и Гассер, 1999; Д.В., 1980; Робертс и Янови мл., 2000)

Хищничество

На этих паразитов, вероятно, не охотятся напрямую, а передаются от хозяина к хозяину. Смертность личинок высока, так как большинство паразитов не достигают подходящих хозяев.

Экосистемные роли

Ancylostoma duodenale в основном поражает людей, но к паратеническим хозяевам относятся псовые и кошачьи, у которых она может оставаться в течение некоторого времени, пока не достигнет окончательного хозяина.

Экономическое значение для человека: отрицательный результат

Инфицированные люди подвержены недоеданию, истощению белка и железа из рациона. Другие эффекты включают задержку роста и интеллект ниже среднего у развивающихся детей, снижение реакции антител на инфекционные агенты и анемию из-за тяжелой кровопотери и дефицита железа среди других побочных эффектов. В некоторых случаях тяжелые инвазии могут привести к летальному исходу из-за заражения другими гельминтами или малярией, а также из-за чрезмерной кровопотери и других видов осложнений.Младенцы недавно были признаны в области общественного здравоохранения уязвимыми. Анкилостомоз чаще встречается у женщин, чем у мужчин.

Туристам, посещающим районы с плохой санитарией, следует опасаться заражения, особенно в регионах с влажным климатом.

Лечение довольно простое с помощью мебендазола, альбендазола и левамизола. Использование пищевых добавок важно для компенсации потери питательных веществ.(Beigal, et al., 2000; Bennett and Guyatt, 2000; Changhua, et al., 1999; Roberts and Janovy Jr., 2000; Sen-Hai, et al., 1995)

Авторы

Рене Шерман Малкроун (редактор).

Нагла Фету (автор), Мичиганский университет в Анн-Арборе, Тереза ​​Фридрих (редактор), Мичиганский университет в Анн-Арборе.

Глоссарий

Эфиопский

, проживающих в Африке к югу от Сахары (к югу от 30 градусов северной широты) и на Мадагаскаре.

Неарктика

обитает в Неарктической биогеографической провинции, северной части Нового Света. Это включает в себя Гренландию, канадские арктические острова и всю Северную Америку на юге вплоть до высокогорья центральной Мексики.

Неотропический

, проживающий в южной части Нового Света.Другими словами, Центральная и Южная Америка.

сельскохозяйственный

обитают в ландшафтах, где преобладает сельское хозяйство человека.

двусторонняя симметрия

, имеющий такую ​​симметрию тела, что животное можно разделить в одной плоскости на две зеркальные половины.Животные с билатеральной симметрией имеют дорсальную и вентральную стороны, а также передний и задний концы. Синапоморфия билатерий.

хищник

животное, питающееся в основном мясом

вызывает заболевание у людей

животное, непосредственно вызывающее заболевание у людей.Например, заболевания, вызванные заражением филяриатозными нематодами (слоновость и речная слепота).

химический

использует запахи или другие химические вещества для общения

экзотермический

животные, которые должны использовать тепло, полученное из окружающей среды, и поведенческие адаптации для регулирования температуры тела

внесение удобрений

союз яйцеклетки и сперматозоида

лес
В

лесных биомах преобладают деревья, в остальном лесные биомы могут сильно различаться по количеству осадков и сезонности.

гетеротермический

, температура тела которых колеблется в зависимости от температуры окружающей среды; отсутствие механизма или плохо развитый механизм регуляции внутренней температуры тела.

инфракрасный/тепловой

(как ключевое слово в разделе канала восприятия) Это животное обладает особой способностью обнаруживать тепло от других организмов в окружающей его среде.

внутреннее оплодотворение

оплодотворение происходит в организме самки

подвижный

, способный перемещаться из одного места в другое.

восточный

найден в восточной части мира. Другими словами, Индия и Юго-Восточная Азия.

яйцекладущие

размножение, при котором самка выпускает яйца; развитие потомства происходит вне тела матери.

паразит

организм, который получает питательные вещества от других организмов вредным способом, не вызывающим немедленной смерти

феромоны

химические вещества, выбрасываемые в воздух или воду, которые обнаруживаются другими животными того же вида и реагируют на них

тропический лес
В

тропических лесах, как умеренных, так и тропических, преобладают деревья, часто образующие закрытый полог с небольшим количеством света, достигающего земли.Эпифиты и вьющиеся растения также многочисленны. Осадки обычно не ограничивают, но могут быть несколько сезонными.

кустарниковый лес

кустарниковых леса развиваются в районах с засушливым сезоном.

малоподвижный

остается в той же области

сексуальное

размножение, включающее объединение генетического вклада двух особей, самца и самки

пригородный

проживающих в жилых массивах на окраинах крупных городов или поселков.

тактильный

использует прикосновение для общения

наземный

Жизнь на земле.

тропический

область земли, окружающая экватор, от 23.от 5 градусов северной широты до 23,5 градусов южной широты.

тропическая саванна и пастбища

Наземный биом. Саванны — это луга с разбросанными отдельными деревьями, которые не образуют сомкнутого полога. Обширные саванны встречаются в районах субтропической и тропической Африки и Южной Америки, а также в Австралии.

саванна

Пастбище с разбросанными деревьями или разбросанными группами деревьев, тип сообщества, промежуточный между лугом и лесом.См. также Тропическая саванна и биом пастбищ.

пастбища умеренного пояса

Наземный биом в умеренных широтах (>23,5° северной или южной широты). Растительность состоит в основном из трав, высота и видовое разнообразие которых во многом зависят от количества доступной влаги. Огонь и выпас скота важны для долгосрочного содержания пастбищ.

городской

живут в городах и крупных населенных пунктах, в ландшафтах преобладают человеческие постройки и деятельность.

Ссылки

Эштон, Ф., Г. Шад, Дж. Ли. 1999. Хемо- и термосенсорные нейроны: структура и функция паразитических нематод животных. Ветеринарная паразитология, 84: 297-316.

Барнс, Р. 1987. Зоология беспозвоночных. Орландо, Флорида: Dryden Press.

Бейгал Ю., З. Гринбург, И. Остфельд. 2000. Снять пациента с крючка.Медицинский журнал Новой Англии, 342 (22): 1658-1661.

Беннет А., Х. Гайят. 2000. Снижение кишечной нематодной инфекции: эффективность альбендазола и мебендазола (обзор). Паразитология Сегодня, 16: 71-4.

Бринксворт, Р., С. Харроп, П. Просив, П. Бриндли. 2000. Специфичность хозяина в питающихся кровью паразитах: определяющий вклад ферментов, разлагающих гемоглобин?. Международный журнал паразитологии, 30: 785-790.

Карсон-ДеВитт, Р.1999. Стр. 1475 г. в Медицинской энциклопедии Гейла, 1-е издание. США: Gale Research, Inc.,

.

Чанхуа, Л., З. Сяорун, К. Дунчуань, С. Шухуа, П. Хотез. 1999. Эпидемиология анкилостомозов среди взрослых жителей уездов Хэцзян и Сантай, провинция Сычуань, Китай. Acta Tropica, 73: 243-249.

Чилтон, Н., Р. Гассер. 1999. Различия в последовательности внутренних транскрибируемых спейсеров ДНК у четырех видов анкилостомы. Международный журнал паразитологии, 29: 1971-1977.

DW, 1980. Энциклопедия животного мира, том 5. США: Bay Books.

Робертс, Л., Дж. Янови-младший. 2000. Основы паразитологии. Бостон: McGraw Hill Companies, Inc.,

.

Сен-Хай, Ю., Дж. Зе-Сяо, X. Лун-Ци. 1995. Детская гельминтозная болезнь в Китае. Acta Tropica, 59: 265-270.

Уильямс, Г. 1969. Убийцы чумы. США: Сыновья Чарльза Скрибнера.

Уход за собаками с энтеропатией с потерей белка (Proceedings)

Энтеропатия с потерей белка определяется как потеря белка из кишечника вследствие кишечного заболевания.

Энтеропатия с потерей белка (PLE) определяется как потеря белка из кишечника вследствие кишечного заболевания. Часто это приводит к снижению концентрации сывороточного альбумина (гипоальбуминемия), иногда это сопровождается снижением концентрации сывороточного глобулина (гипоглобулинемия). Строго говоря, любое состояние, приводящее к аномальной потере белка из кишечника, является PLE. Однако, если уровень сывороточного альбумина пациента не снижается, эта потеря белка часто остается незамеченной. Любое кишечное заболевание, если оно достаточно тяжелое, может привести к PLE.Основным механизмом этого является нарушение слизистой оболочки кишечника (слизистого барьера). Поскольку ряд заболеваний может привести к этому нарушению, PLE классифицируется как синдром, а не как болезнь. PLE гораздо чаще диагностируется у собак, чем у кошек. Заболевания, которые, как было установлено, вызывают ЭБК у собак, включают: кишечную лимфангиэктазию (ИЛ), воспалительное заболевание кишечника (ВЗК), рак кишечника (неоплазию), язвы желудочно-кишечного тракта, грибковые инфекции, инвагинацию и желудочно-кишечные паразиты.Энтеропатия с потерей белка может привести к некоторым важным последствиям у наших пациентов, которые могут быть даже опасными для жизни.

Клиническая картина

Из-за разнообразия основных состояний, вызывающих ВЭЛ, у собак любого возраста, породы и пола может развиться ВЭЛ. Тем не менее, было продемонстрировано, что некоторые породы особенно подвержены риску. К ним относятся йоркширские терьеры, мягкошерстные пшеничные терьеры, норвежские лундехунды и басенджи.

Наиболее распространенными клиническими признаками PLE у собак являются диарея, рвота и потеря веса.Важно помнить, что у некоторых собак с PLE может не быть рвоты или диареи, у этих собак обычно, но не всегда наблюдается потеря веса. Другие клинические признаки могут быть связаны с потерей сывороточных белков, особенно альбумина. Они включают асцит, отек и плевральный выпот. Это связано с тем, что альбумин в значительной степени отвечает за удержание жидкости в кровеносных сосудах, способствуя внутрисосудистому онкотическому давлению. Низкое онкотическое давление крови может привести к скоплению жидкости вне кровеносных сосудов.Иногда у собак, страдающих PLE, развивается респираторный дистресс из-за перемещения сгустка крови в легкие (тромбоэмболия легочной артерии). Во время PLE белки крови, в том числе белки, препятствующие самопроизвольному свертыванию крови, теряются в кишечнике. Самый важный из них называется антитромбин. Когда уровень антитромбина падает значительно ниже нормы, у собак повышается риск образования спонтанных тромбов, называемых тромбами.

Физикальное обследование может выявить потерю веса и плохое физическое состояние из-за недоедания.При аускультации грудной клетки можно выявить ослабление легочных шумов из-за плевральной жидкости. Могут присутствовать отеки ног и/или вентральных частей тела из-за отека. При пальпации живота могут быть обнаружены волны жидкости, образования в брюшной полости, увеличенные органы, увеличенные лимфатические узлы или утолщенные петли кишечника.

Диагностический подход

Как обсуждалось ранее, многие животные с ЭБК имеют неспецифические признаки желудочно-кишечного заболевания. Тем не менее, у некоторых собак наблюдается только потеря веса, или снижение сывороточного альбумина может быть даже замечено как случайная находка.Также могут присутствовать признаки снижения уровня альбумина, такие как отеки и асцит. Панель биохимии сыворотки подтвердит гипоальбуминемию. Во многих источниках утверждается, что как альбумин, так и глобулин постоянно снижаются у собак с ЭБЭ. В действительности концентрация глобулина может быть снижена, нормальная или повышена, поэтому более важно учитывать концентрацию альбумина.

После документирования гипоальбуминемии возникает соблазн диагностировать ЭПБ у любой собаки с желудочно-кишечными симптомами.Однако существуют и другие возможные причины гипоальбуминемии, которые могут быть связаны с клиническими признаками диареи, рвоты и потери веса. Возможными причинами концентрации альбумина в сыворотке ниже 2,0 г/дл являются недостаточность печени для выработки альбумина (печеночная недостаточность), потеря из-за тяжелого дерматологического заболевания, потеря из почек (нефропатия с потерей белка) или потеря из кишечника (нефропатия с потерей белка). потеря энтеропатии). Для диагностики ЭБЛ необходимо исключить три другие возможные причины или продемонстрировать повышенную потерю белка с калом.Возможность заболевания печени исследуется путем интерпретации биохимического анализа сыворотки и, возможно, проведения теста на стимуляцию желчных кислот. Наличие тяжелого дерматологического заболевания легко определяется при физикальном осмотре. Нефропатию с потерей белка исследуют путем измерения количества белка в моче. Сначала это можно сделать с помощью анализа мочи. Если таким образом невозможно исключить потерю белка с мочой, следует определить отношение белка мочи к креатинину.

После подтверждения ВЭЛ важно понимать, что это синдром, а не диагноз.Необходимо приложить усилия, чтобы найти первопричину. УЗИ брюшной полости часто является наиболее полезным методом визуализации для оценки желудочно-кишечной системы мелких животных. Изменения на УЗИ брюшной полости часто можно наблюдать у пациентов с ЭПН, но они редко позволяют нам поставить окончательный диагноз. Микроскопическая оценка образцов биопсии кишечника часто является наиболее информативным тестом. Биопсия кишечника может быть получена с помощью эндоскопии, с помощью открытой абдоминальной хирургии или с помощью операции «замочной скважины» на брюшной полости (лапароскопия).Каждая техника имеет свои преимущества и недостатки. В Texas A&M вначале часто проводится эндоскопия. Очень важно провести эндоскопию верхних и нижних отделов желудочно-кишечного тракта, чтобы можно было провести биопсию желудка, двенадцатиперстной кишки, подвздошной и толстой кишки. В большинстве случаев в сочетании с клиническими проявлениями, лабораторными тестами и результатами визуализации гистопатологический анализ эндоскопических биоптатов кишечника может привести, по крайней мере, к предварительному диагнозу и направить на начальное лечение. Однако иногда окончательный диагноз ставится только после оценки реакции пациента на лечение.

 

Обычно из каждого отдела желудочно-кишечного тракта собирают 8–12 образцов. Тщательное обращение с образцами эндоскопической биопсии имеет важное значение для оптимизации диагностической ценности этой процедуры. После сбора иглы тонкого калибра следует использовать для переноса образцов биопсии на гистопатологическую губку, предварительно смоченную физиологическим раствором. Иглы следует использовать для осторожного развертывания образца просветной стороной вверх. Также полезно, чтобы лицо, работающее с образцами, давало эндоскописту обратную связь относительно адекватности образцов.Затем образцы из каждого анатомического отдела желудочно-кишечного тракта помещают в отдельные контейнеры, содержащие достаточный объем нейтрального забуференного формалина, и отправляют на обработку и анализ.

Общие причины

Хотя любое кишечное заболевание, достаточно серьезное, чтобы вызвать потерю барьерной функции слизистой оболочки, может привести к ЭПБЛ, общепризнано, что некоторые заболевания вызывают ЭПБЛ.

Кишечная лимфангиэктазия характеризуется расширением лимфатических сосудов кишечника.Считается, что это наиболее частая причина PLE у собак. ИЛ встречается как в врожденной форме (первичная ИЛ), так и в приобретенной форме (вторичная ИЛ). Первичный ИЛ представляет собой аномалию развития, которая приводит к недостаточности или порокам развития лимфатических сосудов. Это состояние может повлиять на другие части тела, а также на кишечник. Вторичный ИЛ возникает из-за обструкции лимфотока. Это развивается либо из-за физической закупорки лимфатических сосудов, либо из-за высокого венозного давления. Млечные железы могут быть физически заблокированы воспалением или раком кишечника.Когда поток лимфы затруднен, лимфа с высоким содержанием белка просачивается в стенку кишечника. Эта утечка белка способствует кишечному заболеванию. К первичному ИЛ предрасположены йоркширские терьеры, мальтийские болонки, ротвейлеры и норвежские лундехунды. Диагноз ИЛ основывается на документальном подтверждении ЭПН, обнаружении поражений, соответствующих ИЛ, при гистопатологической оценке биопсии кишечника и исключении других основных причин, таких как сердечная недостаточность. Во время эндоскопии на слизистой оболочке кишечника могут быть видны вздутые млечные железы в виде множественных белых пятен.

Воспалительное заболевание кишечника (ВЗК) определяется как хроническое воспаление стенки кишечника. Идиопатический ВЗК диагностируется на основании наблюдения воспалительных клеточных инфильтратов в стенке кишечника при биопсии кишечника и исключения других причин воспаления. Эти другие причины включают диетическую непереносимость или аллергию, антибиотикозависимую энтеропатию (заболевание кишечника) и паразитов. При идиопатическом ВЗК воспалительные клетки накапливаются в стенке кишечника по неизвестной причине. Воспаление часто классифицируют в зависимости от того, какие типы клеток преобладают.Лимфоплазмоцитарное воспаление является наиболее часто выявляемой разновидностью ВЗК у собак и кошек. ВЗК должно быть тяжелым, чтобы привести к потере кишечного белка.

Некоторые породы собак предрасположены к различным формам PLE. У мягкошерстных пшеничных терьеров часто развивается наследственный PLE, характеризующийся ИЛ и воспалением стенки кишечника с одновременной нефропатией с потерей белка. У басенджи может развиться так называемая иммунопролиферативная энтеропатия. Синдром Лундехунда характеризуется гастритом, ИЛ и ВЗК.

Лимфома — распространенный рак, возникающий из лейкоцитов, называемых лимфоцитами. Лимфома может поражать многие части тела, включая кишечник. Примерно у 75% собак с кишечной лимфомой будет гипоальбуминемия. Лимфому можно диагностировать на основании биопсии кишечника, хотя эндоскопическая биопсия может быть недостаточно глубокой, чтобы отличить этот рак от воспаления кишечника. Лабораторные тесты, такие как иммунофенотипирование и ПЦР на перестройку антигенных рецепторов, могут помочь дифференцировать лимфому от ВЗК.Аденокарцинома и другие опухоли также могут вызывать ЭПБ из-за кровопотери и изъязвления слизистой оболочки. Эти опухоли могут быть ограничены одним отделом кишечника. Из-за этого доступ к ним с помощью эндоскопа может быть невозможен. Следовательно, может потребоваться хирургическая биопсия или тонкоигольная аспирация любой имеющейся массы. УЗИ брюшной полости может помочь в выборе метода отбора проб, который лучше всего использовать.

Histoplasma capsulatum — это грибковый организм, который может вызывать желудочно-кишечные заболевания у собак и кошек.Гистоплазмы редко поражают желудочно-кишечный тракт кошек, но достаточно часто встречаются у собак. Диагноз часто можно поставить при цитологическом исследовании ректальных соскобов, аспиратов лимфатических узлов, аспиратов печени или селезенки, в зависимости от того, какие органы поражены. Иногда диагноз ставится при биопсии кишечника, но обычно в этом нет необходимости. Также доступен анализ мочи/сыворотки на антиген (Histoplasma EIA, Mira Vista Laboratories).

Лечение

Поскольку у наших пациентов существует множество основных причин PLE, единого протокола лечения этого синдрома не существует, у каждого пациента разные потребности.Целями терапии являются лечение основной причины и поддержка пациента. Лечение ИЛ и ВЗК, а также поддерживающая терапия обсуждаются ниже.

 

Основой лечения ИЛ является кормление с ультранизким содержанием жиров и высокой усвояемостью. Снижение содержания жира в рационе снижает количество жира, которое необходимо транспортировать в млечные железы кишечника, тем самым в некоторой степени уменьшая проблему непроходимости млечных путей. Коммерческими кормами с самым низким содержанием жира являются Royal Canin Digestive Low-Fat и Hill I/D Low-Fat.Альтернативой является использование диеты из вареной обезжиренной индейки и риса. Эта домашняя диета содержит очень мало жира и может быть полезна для собак с пищевой непереносимостью или аллергией. Эту диету можно использовать первоначально, и если пациент отвечает через 2–3 недели, ее необходимо дополнить, чтобы сделать ее питательно сбалансированной. Коммерческие диеты для похудения не подходят для собак с ЭБЭ, потому что, хотя они имеют довольно низкое содержание жира, они ограничены в калориях, и обычно эти собаки уже сильно истощены.Некоторым очень больным пациентам с ЭПБ может помочь элементарная диета, такая как Vivonex T.E.N. Элементарные диеты содержат очень мало жира и очень легко усваиваются, так как содержат аминокислоты, а не белки. Они дороги и поэтому обычно используются для кратковременного питания. В некоторых случаях ИЛ присутствует компонент воспаления, который может быть основной проблемой или может возникать вторично из-за утечки жидкости, богатой белком. Наличие воспаления определяется путем оценки биоптатов кишечника.В этом случае пациенту могут помочь противовоспалительные препараты. Обычно выбирают преднизолон, азатиоприн и циклоспорин.

Как обсуждалось ранее, ВЗК должно быть тяжелым, чтобы вызвать ВЭЛ. Следовательно, необходимо агрессивное лечение. Противовоспалительные препараты являются основным методом лечения ВЗК. Обычно выбирают преднизолон, азатиоприн и циклоспорин. Преднизолон и преднизолон являются наиболее часто используемыми противовоспалительными препаратами для лечения ВЗК, они дешевы и часто эффективны.Однако эти препараты часто имеют нежелательные побочные эффекты при использовании в более высоких дозах. Азатиоприн часто используется в сочетании с преднизолоном для обеспечения дополнительной иммуносупрессии или для того, чтобы можно было использовать более низкую дозу преднизолона. Этот препарат может иметь серьезные побочные эффекты (он может повлиять на печень и костный мозг), и его НЕЛЬЗЯ использовать у кошек. Кроме того, требуется до 2 недель лечения, прежде чем оно станет полностью эффективным. Это важное соображение для больного пациента. Циклоспорин — новый иммунодепрессант, который обычно хорошо переносится и быстро действует.Это дорого, особенно для крупных собак, и в настоящее время имеется много данных, подтверждающих его использование при ВЗК, хотя предварительные данные обнадеживают. Диетическое управление также важно для собак с ВЗК. Часто собакам с ВЗК и ЭПБ не проводят пробную диету перед биопсией, поэтому часто имеет смысл попробовать диету с новым антигеном или диетой с гидролизованным антигеном. Однако, если микроскопическая оценка биопсии кишечника позволяет предположить или подтвердить диагноз ИЛ, я рекомендую кормить ребенка диетой с ультранизким содержанием жиров.

Поддерживающая терапия

Из-за гипоальбуминемии, желудочно-кишечных заболеваний и возможности образования спонтанных тромбов пациенты с ПЭЛ являются хрупкими. Поэтому поддерживающая терапия чрезвычайно важна.

Обеспечение адекватного питания имеет жизненно важное значение. Больные, у которых рвота или тяжелые заболевания желудочно-кишечного тракта, могут отказываться от еды. Часто первым шагом является лечение тошноты противорвотными средствами, такими как маропитант (Cerenia). Если это неэффективно, может потребоваться кормление через зонд.У собак малого и среднего размера я предпочитаю пищеводную трубку для кормления, в то время как я обычно устанавливаю гастростомические трубки эндоскопически у более крупных собак, а у гигантских пород или пород с глубокой грудью может потребоваться хирургическое введение гастростомической трубки. Принудительное кормление из шприца не является практичным долгосрочным решением. Потребность собаки в энергии в состоянии покоя (RER) следует оценивать по следующей формуле: RER (килокалории) = масса тела (кг) 0,75. Для пациентов, страдающих анорексией более двух дней, рекомендуется кормить ½ расчетной RER в течение первых 24 часов, а затем увеличить до полной дозы на следующий день, если кормление хорошо переносится.Со временем истощенным собакам важно давать больше калорий, чем расчетное RER, чтобы они набирали вес. Один из методов заключается в оценке целевого веса собаки и расчете RER кормления на основе этого. Общий объем пищи за этот день следует разделить на 4−6 приемов пищи. Несмотря на то, что это занимает много времени, эти приемы пищи следует давать медленно в течение 10-20 минут. Если у пациента рвота или тошнота, может быть полезно подогреть пищу приблизительно до температуры тела или давать ее в виде непрерывной инфузии с помощью шприцевого насоса.

При необходимости введение внутривенных жидкостей, обеспечивающих онкотический эффект, может помочь уменьшить накопление жидкости и, следовательно, стабилизировать кровообращение у собаки. Это может быть особенно важно до или во время анестезии. Однако часто у этих собак была хроническая гипоальбуминемия, поэтому они компенсировали низкое онкотическое давление крови и не нуждались в коллоидной поддержке. Синтетические коллоиды (такие как Hetastarch) в настоящее время являются моими предпочтениями для обеспечения коллоидной поддержки собак с PLE.Растворы человеческого альбумина доступны и иногда используются у собак с тяжелой гипоальбуминемией, но могут быть связаны с серьезными побочными эффектами из-за иммунных реакций. Переливание плазмы не является практичным способом повышения уровня сывороточного альбумина у собак в большинстве случаев, поскольку необходимо вводить относительно большие количества, что для всех собак, кроме очень маленьких, является непомерно дорогим.

Меры по снижению риска тромбоза включают введение сверхнизких доз аспирина (0,5 мг/кг перорально каждые 24 часа) или клопидогрела (плавикс; 1–3 мг/кг перорально каждые 24 часа), тщательный уход за внутривенными катетерами, отсутствие необходимости внутривенные катетеры и часто побуждают пациентов двигаться.

Собаки с ЭБВ часто имеют низкие концентрации витамина B12 (кобаламина) в сыворотке крови, так как они не могут всасывать этот витамин из тонкого кишечника. Добавление кобаламина путем подкожной инъекции может исправить это и может улучшить желудочно-кишечные симптомы пациента, а также его аппетит. Важно использовать инъекционный цианокобаламин, а не инъекционные смеси витамина В, поскольку они не содержат достаточного количества кобаламина.

Доброкачественные опухоли печени и кистозные заболевания печени

Этот тип заболевания представляет собой паразитарную инвазию ленточным червем, известным как «echinococcus granulosus».Этот паразит, который живет в основном у собак, проникает в ваш организм в виде личинок. Это может произойти, когда вы контактируете с зараженным животным или едите пищу или пьете воду, загрязненную его фекалиями. Личинки перемещаются с кровотоком и поселяются в органах, образуя цисты. Чаще всего поражается печень (там формируется 70 % эхинококковых кист), затем следуют легкие, мозг и кости.

Кисты становятся больше и в некоторых случаях образуют массу. Это может занять десятилетия, и не все кисты активны. Растущие кисты могут привести к повреждению тканей вашего тела либо напрямую, либо путем воздействия на кровоток.Они также могут разорваться или протекать, что может привести к аллергической реакции и шоку (анафилаксии). Если разрыв затрагивает желчные протоки, может последовать холангит. Более серьезно, вторичная инфекция может возникнуть, если это произойдет в ваших легких. Разрыв кисты также приведет к дальнейшему распространению болезни в организме.

Эхинококковые кисты очень редко встречаются в Великобритании, и с большей вероятностью они заражаются за границей, где был контакт с овчарками и другими животными. Чаще всего это южная Европа, Ближний Восток, Австралия, Новая Зеландия и Южная Америка.

Родственный паразит, эхинококк многокамерный, обнаружен в северном полушарии. Он живет у диких лисиц и передается при контакте с грызунами. Он попадает в организм человека так же, как эхинококк гранулокус, но киста ведет себя больше как раковая опухоль.

Оба паразита могут вызывать тяжелые заболевания печени, но встречаются очень редко. По оценкам, они затрагивают только одного человека из 100 000 в Великобритании. Сначала симптомы могут быть общими, а могут быть неспецифическими. Как правило, они вызваны давлением из-за размера кист.Возможные симптомы могут включать:

Поскольку паразит медленно растет в вашем теле, его редко диагностируют в детстве или подростковом возрасте, если не поражен ваш мозг. Диагноз эхинококкового заболевания обычно достигается с помощью анализов крови и визуализирующих тестов.

Функциональные тесты печени используются вместе с тестом в основном в иммунологии для выявления присутствия антигенов или антител, известным как иммуноферментный анализ (ELISA). Антигены — это вторгающиеся или чужеродные белки, а антитела — это белки, которые ваш организм вырабатывает для защиты от них.

КТ и УЗИ чаще всего используются для выявления одиночных или множественных кист. МРТ можно использовать для получения более подробной информации, которая поможет врачам решить, являются ли кисты активными, неактивными или чем-то средним (переходным). ЭРХПГ можно использовать для выявления кист в желчных протоках.

Лекарства обычно используются в первую очередь при лечении эхинококковой болезни, чтобы помочь предотвратить любое распространение болезни, хотя во многих случаях по-прежнему требуется хирургическое вмешательство. Препаратами первой линии являются альбендазол и мебендазол.Эти препараты вводятся перорально, и они всасываются через мембрану кисты, влияя на ее рост. Вам придется принимать эти препараты в течение трех месяцев. Другой препарат, празиквантел, можно назначать в течение 14 дней, и теперь он иногда используется в сочетании с альбендазолом и мебендазолом.

От трети до половины кист, леченных лекарствами, могут уменьшиться или исчезнуть. Если требуется операция, цель обычно состоит в том, чтобы полностью удалить кисту. Это может быть сложно, особенно в случае вторичной инфекции кисты, и в некоторых случаях может нести значительный риск смерти.

CDC – DPDx – Процедуры диагностики

Дуоденальные аспираты могут быть полезны для демонстрации личинок Giardia duodenalis или Strongyloides stercoralis . Материал, собранный после интубации через нос и желудок в верхний отдел тонкой кишки, может быть отправлен в лабораторию. Отцентрифугируйте образец при 500 × g в течение 2–3 минут и исследуйте влажный препарат. Нефиксированный образец можно исследовать немедленно или, если образец нельзя исследовать в течение 1–2 часов после сбора, его следует сохранить в 10% формалине.

Ректороманоскопический материал и абсцессы печени и легкого могут обнаруживать амебные трофозоиты. Материал с поверхности слизистой оболочки или из видимых поражений следует аспирировать. Этот материал можно исследовать сразу в 0,85% растворе влажного препарата (или часть этого материала можно поместить в формалин) или зафиксировать в ПВА. После фиксации в ПВА материал можно окрасить трихромным красителем и исследовать на наличие трофозоитов Entamoeba histolytica .Для подтверждения амебиаза доступен тест ПЦР в реальном времени, который обнаруживает E. histolytica на уровне вида. Если необходима молекулярная диагностика, образцы следует хранить без консервантов и хранить в холодильнике или в замороженном виде.

Материал лимфатических узлов, костный мозг и селезенка могут быть исследованы на наличие подвижных трофозоитов Trypanosoma brucei gambiense или Trypanosoma brucei rhodesiense . В случае инфекции Leishmania donovani материал, полученный путем аспирации иглой из костного мозга или селезенки, может быть использован для демонстрации амастиготных стадий.Затем можно приготовить мазки путем фиксации в метаноле и окрашивания красителем Гимза.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.