Ротавирусные инфекции: ᐈ Ротавирус: симптомы, лечение ~【Киев】

Содержание

Ротавирусные инфекции – диагностика и лечение по доступным ценам в Челябинске

Ротавирусная инфекция чаще всего возникает у детей, но страдают от нее и взрослые. Возбудителем заболевания является ротавирус – частица, устойчивая к агрессивным факторам среды. Заразиться можно через воду, грязные руки, предметы быта. В редких случаях ротавирус переносится воздушно-капельным путем.

Ребенок страдает от повышенной температуры, рвоты, диареи, общей слабости и потери аппетита, боли в горле? Немедленно обратитесь к врачу! Он быстро распознает ротавирусную инфекцию и назначит лечение. В клинике аллергологии и иммунологии «СитиМед» терапия проводится комплексно и позволяет быстро достичь выраженного эффекта.

Почему важно проводить комплексное и своевременное лечение?

Ротавирусная инфекция не просто сопровождается неприятными симптомами, а еще и опасна тем, что может стать причиной:

•    вторичной бактериальной инфекции;

•    обезвоживания организма; 

•    нарушений в работе сердечно-сосудистой системы.

Самостоятельное лечение ротавирусной инфекции часто не дает выраженного эффекта. Состояние может усугубляться!

Как проводится лечение?

Наши врачи точно знают, как лечить ротавирусную инфекцию.

Терапия проводится комплексно и направлена не только на устранение симптомов, но и на:
•    нормализацию водно-электролитного баланса;
•    детоксикацию;
•    предупреждение осложнений;
•    восстановление нормальной работы ряда систем и органов.

Как правило, лечение ротавирусной инфекции не требует госпитализации. Амбулаторная терапия, подобранная с учетом состояния ребенка, его индивидуальных особенностей и сопутствующих патологий, является эффективной.

Наши специалисты готовы не только избавить малыша от признаков патологии, но и предупредить ее появление в дальнейшем. Эффективная профилактика позволяет забыть о любых проблемах в работе желудочно-кишечного тракта, иных систем и органов. 

Звоните по телефону: (351) 265-55-15! Администратор клиники запишет на прием в удобное время. Лечение не придется откладывать.

РАСПРОСТРАНЕННОСТЬ И ОСНОВНЫЕ ПРОЯВЛЕНИЯ ЗАБОЛЕВАЕМОСТИ РОТАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИЕЙ В РАЗЛИЧНЫХ РЕГИОНАХ МИРА | Кудрявцев

1. Parashar U. D., Gibson C. J., Bresee J. S., Glass R. I. Rotavirus and severe childhood diarrhea. EID. 2006; 12 (2): 304–306.

2. Parashar U. D., Burton A., Lanata C., Boschi-Pinto C., Shibuya K., Steele D., Birmingham M., Glass R. I. Global mortality associated with rotavirus disease among children in 2004. JID. 2009; 200: 9–15.

3. Tate J. E., Burton A. H., Boschi-Pinto C., Steele A. D., Duque J., Parashar U. D. 2008 estimate of worldwide rotavirus-associated mortality in children younger than 5 years before the introduction of universal rotavirus vaccination programs: a systematic review and meta-analysis. Lancet. 2011; 12 (2): 136–141. Doi: 10.1016/S1473-3099 (11)70253–5.

4. Rotavirus vaccines. WHO position paper. 2013; 5 (88): 49–64. URL: http://www.who.int/wer

5. Iturriza-Gomara M., Dallman T., Banyai K. Rotavirus surveillance in Europe, 2005–2008: Web-enabled reporting and real-time analysis of genotyping and epidemiological data. JID. 2009; 11: 215–221. Doi: 10.1086/605049.

6. Эпидемиологический надзор, лабораторная диагностика и профилактика ротавирусной инфекции (утв. Главным государственным санитарным врачом РФ). Методические указания (МУ 3.1.12957-11). М., 2011.

7. Сагалова О. И. Клинико-иммунологическая характеристика кишечных инфекций вирусной этиологии у взрослых. Автореф. дис. … докт. мед. наук. М., 2009.

8. Профилактика инфекционных заболеваний. Профилактика острых кишечных инфекций. Санитарно-эпидемиологические правила (СП 3.1.1.1117-02). М., 2002.

9. Velazquez F. R., Matson D. O., Calva J. J., Guerrero L., Morrow A. L., Carter-Campbell S., Glass R. I., Estes M. K., Pickering L. K., Ruiz-Palacios G. M. Rotavirus infection in infants as protection against subsequent infections. N Engl J Med. 1996; 335: 1022–8.

10. Vesikari Т. et al. Rotavirus vaccination: a concise review. Clinical microbiology and infection diseases. 2012; 18 (Suppl. 5): 57–63.

11. Cunliffe N. A., Kilgore P. E., Bresee J. S., Steele A. D., Luo N., Hart C. A., Glass R. I. Epidemiology of rotavirus diarrhea in Africa: a review to assess the need for rotavirus immunization. Bull World Health Organ. 1998; 76 (5): 525–537.

12. Levy K., Hubbard A. E., Eisenberg J. N. S. Systematic reviews. Seasonality of rotavirus disease in the tropics: a systematic review and meta-analysis. Int J Epidemiol. 2009; 38 (6): 1487–1496. Doi: 10.1093/ije/dyn260.

13. Dey A., Wang H., Menzies R., Macartney K. Changes in hospitalisations for acute gastroenteritis in Australia after the national rotavirus vaccination program. Med J Aust. 2012; 197 (8): 453–457. Doi: 10.5694/mja12.10062.

14. Kirkwood C. D., Boniface K., Bogdanovic-Sakran N., Masendycz P., Barnes G. L., Bishop R. F. Rotavirus strain surveillance — an Australian perspective of strains causing disease in hospitalized children from 1997 to 2007. Vaccine. 2009; 27 (5): 102–107. Doi: 10.1016/j.vaccine.2009.08.070.

15. Близнюк А. М., Петровская О. Н., Запольская В. В., Рашкевич И. И., Чистенко Г. Н., Фисенко Е. Г. Проявления эпидемического процесса ротавирусной инфекции в г. Минске. Медицинский журнал. 2011; 2: 129–131.

16. Podkolzin A. T., Fenske E. B., Abramycheva N. Y., Shipulin G. A., Sagalova O. I., Mazepa V. N., Ivanova G. N., Semena A. V., Tagirova Z. G., Alekseeva M. N., Molochny V. P., Parashar U. D. Hospital-Based surveillance of rotavirus and other viral agents of diarrhea in children and adults in Russia, 2005–2007. The Journal of Infectious Diseases. 2009; 200: 228–33.

17. Подколзин А. Т., Петухов Д. Н., Веселова О. А. Отчет РЦКИ. Данные о циркуляции ротавирусов группы А в РФ в зимний сезон 2011–2012 гг. Публикация Референс-центра по мониторингу возбудителей кишечных инфекций доступна на интернет странице центра (www.epid-oki.ru). ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, РЦКИ. Москва. 2012.

18. Country National Immunization Program (NIP). URL: http://sites.path.org/rotavirusvaccine/files/2012/12/PATH_Country-Introduction-Interactive-Spreadsheet_EN.pdf

19. Kirkwood C. D., Boniface K., Barnes G. L., Bishop R. F. Distribution of rotavirus genotypes after introduction of rotavirus vaccines. Rotarix (R) and RotaTeq (R), into the national immunization program of Australia. Pediatric Infectious Disease Journal. 2011, 30: 48–53.

20. Cortes J. et al. Ротавирусная вакцина и потребность в медицинской помощи по поводу диареи у детей в США. N Engl J Med. 2011; 365: 1108–17.

21. Lopman B. A., Curns A. T., Yen C., Parashar U. D. Infant rotavirus vaccination may provide indirect protection to older children and adults in the United States. The Journal of Infectious Diseases. 2011; 204: 980–6.

22. Glass R. Unexpected benefits of rotavirus vaccination in the United States. The Journal of Infectious Diseases. 2011; 204: 975–7.

23. Zeller M., Rahman M., Heylen E., De Coster S., De Vos S., Arijs I., Novo L., Verstappen N., Van Ranst M., Matthijnssens J. Rotavirus incidence and genotype distribution before and after national rotavirus vaccine introduction in Belgium. Vaccine. 2010; 28 (47): 7507–7513. Doi: 10.1016/j.vaccine.2010.09.004.

Ротавирусная инфекция

Заболевания у человека вызывают ротавирусы групп А, В и С. Готовые наборы реагентов имеются для выявления ротавирусов группы А, имеющих наибольшее эпидемиологическое значение. На территориях, где не применяются ротавирусные вакцины, ротавирусы являются наиболее широко распространенной причиной диарейных заболеваний у детей в возрасте до 5 лет.

Показания к обследованию

  • Все пациенты детского возраста при наличии диарейного синдрома;
  • взрослые пациенты при наличии диарейного синдрома в период сезонного подъема заболеваемости (в РФ с октября–ноября по май–июнь).

Материал для исследований

Нативные образцы фекалий, собранные в первые 72 ч от начала заболевания. Диагностическая ценность исследования мазков со слизистых верхних дыхательных путей, крови пациентов в острую фазу заболеваний малоинформативно.

Этиологическая лабораторная диагностика включает выявление АГ или РНК ротавирусов группы А в образцах фекалий.

Сравнительная характеристика методов лабораторной диагностики

Наиболее распространенные исследования – выявление АГ ротавирусов группы А в фекалиях пациентов методом ИФА, реже – латекс-агглютинации и ИХА. Меньшее распространение получило выявление РНК ротавирусов группы А с использованием ПЦР. Описанное ранее выявление РНК ротавирусов группы А с использованием электрофоретической детекции сегментированного генома в полиакриламидном геле в настоящее время находит ограниченное применение для научно- исследовательских целей.

Аналитическая чувствительность выявления РНК ротавирусов при использовании ПЦР выше, чем при выявлении их АГ, но с учетом высокой концентрации ротавирусов в фекалиях в первые дни болезни это не приводит к большим различиям в диагностической чувствительности названных исследований. Гораздо большее влияние на результат исследований может оказать низкая специфичность наборов реагентов. На территории РФ используются наборы реагентов, имеющие показатели диагностической специфичности/чувствительности по отношению к референтным тест-системам* 45/62 и 90/60 соответственно. При обследовании пациентов позже 72 ч от начала заболевания, а также лиц со стертой клинической симптоматикой для детекции ротавирусов целесообразно использовать более чувствительный метод – выявление РНК методом ПЦР.

Выделение вируса в культуре клеток в практике клинико-диагностических лабораторий не используется.

Показания к применению

Выявление АГ ротавирусов в фекалиях методом ИФА целесообразно использовать в качестве скринингового исследования в зимне-весенний период в РФ у госпитализированных детей в возрасте до 5 лет, поскольку в данный период ротавирусная инфекция выявляется у 70–80% таких пациентов. Выявление АГ ротавирусов в фекалиях методами ИХА – исследование «у постели пациента» – может быть рекомендовано только при отсутствии возможности проведения исследований в лабораторных условиях вследствие низкой диагностической чувствительности.

Выявление РНК ротавирусов методом ПЦР экономически целесообразно при применении мультиплексных тест-систем, в рамках комплексной детекции нескольких вирусных/бактериальных патогенов и незаменимо при исследовании материала от пациентов на поздних стадиях заболевания (после 3-го дня болезни).

Особенности интерпретации результатов лабораторных исследований

Среди клинически здоровых лиц носительство ротавирусов (транзиториное и связанное с недавно перенесенным заболеванием) встречается довольно редко (дети – до 1,8%, взрослые – 0,8%). По этой причине, при использовании наборов реагентов, обладающих высокой специфичностью, интерпретация положительных результатов исследований не вызывает затруднений. Случаи сочетанного выявления ротавирусов и других возбудителей ОКИ могут быть связаны с длительностью выделения ротавирусов с фекалиями после перенесенного заболевания (при использовании высокочувствительных тест-систем вирус может быть обнаружен в течение 30–40 дн.).

Эффективность и безопасность вакцин для профилактики ротавирусной инфекции | Шевцов

1. Bruijning-Verhagen P, Mangen MJ, Felderhof M, Hartwig NG, van Houten M, Winkel L, et al. Targeted rotavirus vaccination of high-risk infants; a low cost and highly cost-effective alternative to universal vaccination. BMC Med. 2013;11:112. https://doi.org/10.1186/1741-7015-11-112

2. Rheingans RD, Antil L, Dreibelbis R, Podewils LJ, Bresee JS, Parashar UD. Economic costs of rotavirus gastroenteritis and cost-effectiveness of vaccination in developing countries. J Infect Dis. 2009;200(Suppl. 1):S16–27. https://doi.org/10.1086/605026

3. Haider S, Chaikledkaew U, Thavorncharoensap M, Youngkong S, Islam MA, Thakkinstian A. Systematic Review and Meta-Analysis of Cost-effectiveness of Rotavirus Vaccine in Low-Income and Lower-Middle-Income Countries. Open Forum Infect Dis. 2019;6(4):ofz117. Published 2019 Mar 8. doi:10.1093/ofid/ofz117

4. Parez N, Giaquinto C, Du Roure C, Martinon-Torres F, Spoulou V, Van Damme P, Vesikari T. Rotavirus vaccination in Europe: drivers and barriers. Lancet Infect Dis. 2014;14(5):416–25. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(14)70035-0

5. Ricciardi GW, Toumi M, Weil-Olivier C, Ruitenberg EJ, Dankó D, Duru G, et al. Comparison of NITAG policies and working processes in selected developed countries. Vaccine. 2015;33(1):3–11. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2014.09.023

6. St-Martin G, Lindstrand A, Sandbu S, Fischer TK. Selection and interpretation of scientific evidence in preparation for policy decisions: a case study regarding introduction of rotavirus vaccine into National Immunization Programs in Sweden, Norway, Finland, and Denmark. Front Public Health. 2018;6:131. https://doi.org/10.3389/fpubh.2018.00131

7. Bernstein DI. Rotavirus vaccines: mind your Ps and Gs. J Infect Dis. 2018;218(4):519–21. https://doi.org/10.1093/infdis/jiy203

8. Tate JE, Parashar UD. Approaches to monitoring intussusception following rotavirus vaccination. Expert Opin Drug Saf. 2019;18(1):21–7. https://doi.org/10.1080/14740338.2019.1561857

9. Pollard SL, Malpica-Llanos T, Friberg IK, Fischer-Walker C, Ashraf S, Walker N. Estimating the herd immunity effect of rotavirus vaccine. Vaccine. 2015;33(32):3795–800. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2015.06.064

10. Burke RM, Tate JE, Dahl RM, Aliabadi N, Parashar UD. Rotavirus vaccination is associated with reduced seizure hospitalization risk among commercially insured US children. Clin Infect Dis. 2018;67(10):1614–6. https://doi.org/10.1093/cid/ciy424

11. Payne DC, Baggs J, Zerr DM, Klein NP, Yih K, Glanz J, et al. Protective association between rotavirus vaccination and childhood seizures in the year following vaccination in US children. Clin Infect Dis. 2014;58(2):173–7. https://doi.org/10.1093/cid/cit671

12. Standaert B, Strens D, Li X, Schecroun N, Raes M. The sustained rotavirus vaccination impact on nosocomial infection, duration of hospital stay, and age: the RotaBIS study (2005–2012). Infect Dis Ther. 2016;5(4):509–24. https://doi.org/10.1007/s40121-016-0131-0

13. Hutubessy RC, Baltussen RM, Torres-Edejer TT, Evans DB. Generalised cost-effectiveness analysis: an aid to decision making in health. Appl Health Econ Health Policy. 2002;1(2):89–95.

14. Glass RI. Priority setting for the introduction of rotavirus vaccine: what evidence was essential? Cost Eff Resour Alloc. 2018;16(Suppl. 1):42. https://doi.org/10.1186/s12962-018-0126-7

15. Oldin C, Golsäter M, Schollin Ask L, Fredriksson S, Stenmarker M. Introduction of rotavirus vaccination in a Swedish region: assessing parental decision-making, obtained vaccination coverage and resulting hospital admissions. Acta Paediatr. 2019;108(7):1329–37. https://doi.org/10.1111/apa.14674

16. Баранов АА, Намазова-Баранова ЛС, Таточенко ВК, Вишнева ЕА, Федосеенко МВ, Селимзянова ЛР и др. Ротавирусная инфекция у детей – нерешенная проблема. Обзор рекомендаций по вакцинопрофилактике. Педиатрическая фармакология. 2017;14(4):248–57. https://doi.org/10.15690/pf.v14i4.1756

17. Рудакова АВ, Харит СМ, Усков АН, Лобзин ЮВ. Оценка предотвращенных затрат на терапию ротавирусной инфекции при вакцинации 5-валентной вакциной в Российской Федерации. Журнал инфектологии. 2014;6(2):71–5.

18. Костинов МП, Зверев ВВ. Экономическая эффективность вакцинации против ротавирусной инфекции в Российской Федерации. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2012;(3):50–5.

19. Midthun K, Kapikian AZ. Rotavirus vaccines: an overview. Clin Microbiol Rev. 1996;9(3):423–34. https://doi.org/10.1128/CMR.9.3.423

20. Ward RL, McNeal MM, Steele AD. Why does the world need another rotavirus vaccine? Ther Clin Risk Manag. 2008;4(1):49–63. https://doi.org/10.2147/tcrm.s821

21. Kapikian AZ, Simonsen L, Vesikari T, Hoshino Y, Morens DM, Chanock RM, et al. A hexavalent human rotavirus-bovine rotavirus (UK) reassortant vaccine designed for use in developing countries and delivered in a schedule with the potential to eliminate the risk of intussusception. J Infect Dis. 2005;192(Suppl. 1):S22–9. https://doi.org/10.1086/431510

22. Vesikari T, Karvonen AV, Majuri J, Zeng SQ, Pang XL, Kohberger R, et al. Safety, efficacy, and immunogenicity of 2 doses of bovine-human (UK) and rhesus–rhesus-human rotavirus reassortant tetravalent vaccines in Finnish children. J Infect Dis. 2006;194(3):370–6. https://doi.org/10.1086/505151

23. Zade JK, Kulkarni PS, Desai SA, Sabale RN, Naik SP, Dhere RM. Bovine rotavirus pentavalent vaccine development in India. Vaccine. 2014;32(Suppl. 1):A124–8. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2014.03.003

24. Desai S, Rathi N, Kawade A, Venkatramanan P, Kundu R, Lalwani SK, et al. Non-interference of Bovine-Human reassortant pentavalent rotavirus vaccine ROTASIIL® with the immunogenicity of infant vaccines in comparison with a licensed rotavirus vaccine. Vaccine. 2018;36(37):5519–23. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2018.07.064

25. Dang DA, Nguyen VT, Vu DT, Nguyen TH, Nguyen DM, Yuhuan W, et al. A dose-escalation safety and immunogenicity study of a new live attenuated human rotavirus vaccine (Rotavin-M1) in Vietnamese children. Vaccine. 2012;30(Suppl. 1):A114–21. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.07.118

26. Madhi SA, Parashar UD. 116E rotavirus vaccine development: a successful alliance. Lancet. 2014;383(9935):2106–7. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(13)62701-4

27. Bines JE, At Thobari J, Satria CD, Handley A, Watts E, Cowley D, et al. Human neonatal rotavirus vaccine (RV3-BB) to target rotavirus from birth. N Engl J Med. 2018;378(8):719–30. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1706804

28. Arnold MM. Rotavirus vaccines: why continued investment in research is necessary. Curr Clin Microbiol Rep. 2018;5(1):73–81.

29. Groome MJ, Koen A, Fix A, Page N, Jose L, Madhi SA, et al. Safety and immunogenicity of a parenteral P2-VP8-P[8] subunit rotavirus vaccine in toddlers and infants in South Africa: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet Infect Dis. 2017;17(8):843–53. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(17)30242-6

30. Wen X, Cao D, Jones RW, Li J, Szu S, Hoshino Y. Construction and characterization of human rotavirus recombinant VP8* subunit parenteral vaccine candidates. Vaccine. 2012;30(43):6121–6. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2012.07.078

31. Angel J, Steele AD, Franco MA. Correlates of protection for rotavirus vaccines: possible alternative trial endpoints, opportunities, and challenges. Hum Vaccin Immunother. 2014;10(12):3659–71. https://doi.org/10.4161/hv.34361

32. Holmgren J, Parashar UD, Plotkin S, Louis J, Ng SP, Desauziers E, et al. Correlates of protection for enteric vaccines. Vaccine. 2017;35(26):3355–63. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2017.05.005

33. Desselberger U, Huppertz HI. Immune responses to rotavirus infection and vaccination and associated correlates of protection. J Infect Dis. 2011;203(2):188–95. https://doi.org/10.1093/infdis/jiq031

34. Velázquez FR, Matson DO, Guerrero ML, Shults J, Calva JJ, Morrow AL, et al. Serum antibody as a marker of protection against natural rotavirus infection and disease. J Infect Dis. 2000;182(6):1602–9. https://doi.org/10.1086/317619

35. Patel M, Glass RI, Jiang B, Santosham M, Lopman B, Parashar U. A systematic review of anti-rotavirus serum IgA antibody titer as a potential correlate of rotavirus vaccine efficacy. J Infect Dis. 2013;208(2):284–94. https://doi.org/10.1093/infdis/jit166

36. Lee B, Carmolli M, Dickson DM, Colgate ER, Diehl SA, Uddin MI, et al. Rotavirus-specific immunoglobulin A responses are impaired and serve as a suboptimal correlate of protection among infants in Bangladesh. Clin Infect Dis. 2018;67(2):186–92. https://doi.org/10.1093/cid/ciy076

37. Liu GF, Hille D, Kaplan SS, Goveia MG. Postdose 3 G1 serum neutralizing antibody as correlate of protection for pentavalent rotavirus vaccine. Hum Vaccin Immunother. 2017;13(10):2357–63. https://doi.org/10.1080/21645515.2017.1356522

38. Jiang B, Gentsch JR, Glass RI. The role of serum antibodies in the protection against rotavirus disease: an overview. Clin Infect Dis. 2002;34(10):1351–61. https://doi.org/10.1086/340103

39. Blutt SE, Warfield KL, Lewis DE, Conner ME. Early response to rotavirus infection involves massive B cell activation. J Immunol. 2002;168(11):5716–21. https://doi.org/10.4049/jimmunol.168.11.5716

40. Wang Y, Dennehy PH, Keyserling HL, Tang K, Gentsch JR, Glass RI, Jiang B. Rotavirus infection alters peripheral T-cell homeostasis in children with acute diarrhea. J Virol. 2007;81(8):3904–12. https://doi.org/10.1128/JVI.01887-06

41. Ella R, Bobba R, Muralidhar S, Babji S, Vadrevu KM, Bhan MK. A Phase 4, multicentre, randomized, single-blind clinical trial to evaluate the immunogenicity of the live, attenuated, oral rotavirus vaccine (116E), ROTAVAC®, administered simultaneously with or without the buffering agent in healthy infants in India. Hum Vaccin Immunother. 2018;14(7):1791–9. https://doi.org/10.1080/21645515.2018.1450709

42. Gómez-Rial J, Curras-Tuala MJ, Talavero-González C, Rodríguez-Tenreiro C, Vilanova-Trillo L, Gómez-Carballa A, et al. Salivary epidermal growth factor correlates with hospitalization length in rotavirus infection. BMC Infect Dis. 2017;17:370. https://doi.org/10.1186/s12879-017-2463-0

43. Jiang J, Jiang B, Parashar U, Nguyen T, Bines J, Patel MM. Childhood intussusception: a literature review. PloS One. 2013;8(7):e68482. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0068482

44. Mansour AM, El Koutby M, El Barbary MM, Mohamed W, Shehata S, El Mohammady H, et al. Enteric viral infections as potential risk factors for intussusception. J Infect Dev Ctries. 2013;7(1):28–35. https://doi.org/10.3855/jidc.2321

45. Clarke EJ Jr, Phillips IA, Alexander ER. Adenovirus infection in intussusception in children in Taiwan. JAMA. 1969;208(9):1671–4. https://doi.org/10.1001/jama.1969.03160090031007

46. Minney-Smith CA, Levy A, Hodge M, Jacoby P, Williams SH, Carcione D, et al. Intussusception is associated with the detection of adenovirus C, enterovirus B and rotavirus in a rotavirus vaccinated population. J Clin Virol. 2014;61(4):579–84. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2014.10.018

47. Nylund CM, Denson LA, Noel JM. Bacterial enteritis as a risk factor for childhood intussusception: a retrospective cohort study. J Pediatr. 2010;156(5):761–5. https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2009.11.026

48. Weintraub ES, Baggs J, Duffy J, Vellozzi C, Belongia EA, Irving S, et al. Risk of intussusception after monovalent rotavirus vaccination. N Engl J Med. 2014;370(6):513–9. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1311738

49. Tate JE, Mwenda JM, Armah G, Jani B, Omore R, Ademe A, et al. Evaluation of intussusception after monovalent rotavirus vaccination in Africa. N Engl J Med. 2018;378(16):1521–8. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1713909

50. Дармостукова МА, Снегирева ИИ, Вельц НЮ, Казаков АС, Аляутдин РН. Международный мониторинг безопасности вакцин. Безопасность и риск фармакотерапии. 2019;7(1):6–14. https://doi.org/10.30895/2312-7821-2019-7-1-6-14

51. Soares-Weiser K, Bergman H, Henschke N, Pitan F, Cunliffe N. Vaccines for preventing rotavirus diarrhoea: vaccines in use. Cochrane Database Syst Rev. 2019;(3):CD008521. https://doi.org/10.1002/14651858.CD008521.pub4

52. Yen C, Healy K, Tate JE, Parashar UD, Bines J, Neuzil K, et al. Rotavirus vaccination and intussusception – science, surveillance, and safety: a review of evidence and recommendations for future research priorities in low and middle income countries. Hum Vaccin Immunother. 2016;12(10):2580–9. https://doi.org/10.1080/21645515.2016.1197452

53. Tate JE, Parashar UD. Approaches to monitoring intussusception following rotavirus vaccination. Expert Opin Drug Saf. 2019 ;18(1):21–7. https://doi.org/10.1080/14740338.2019.1561857

54. Desselberger U. Differences of rotavirus vaccine effectiveness by country: likely causes and contributing factors. Pathogens. 2017;6(4):65. https://doi.org/10.3390/pathogens6040065

55. Dennehy PH, Bertrand HR, Silas PE, Damaso S, Friedland LR, Abu-Elyazeed R. Coadministration of RIX4414 oral human rotavirus vaccine does not impact the immune response to antigens contained in routine infant vaccines in the United States. Pediatrics. 2008;122(5):e1062–6. https://doi.org/10.1542/peds.2008-1059

56. Gruber JF, Gruber LM, Weber RP, Becker-Dreps S, Jonsson Funk M. Rotavirus vaccine schedules and vaccine response among infants in low- and middle-income countries: a systematic review. Open Forum Infect Dis. 2017;4(2):ofx066. https://doi.org/10.1093/ofid/ofx066

57. Crawford SE, Ramani S, Tate JE, Parashar UD, Svensson L, Hagbom M, et al. Rotavirus infection. Nat Rev Dis Primers. 2017;3:17083. https://doi.org/10.1038/nrdp.2017.83

58. Willame C, Vonk Noordegraaf-Schouten M, Gvozdenović E, Kochems K, Oordt-Speets A, Praet N, et al. Effectiveness of the oral human attenuated rotavirus vaccine: a systematic review and meta-analysis–2006–2016. Open Forum Infect Dis. 2018;5(11):ofy292. https://doi.org/10.1093/ofid/ofy292

59. Payne DC, Selvarangan R, Azimi PH, Boom JA, Englund JA, Staat MA, et al. Long-term consistency in rotavirus vaccine protection: RV5 and RV1 vaccine effectiveness in US children, 2012–2013. Clin Infect Dis. 2015;61(12):1792–9. https://doi.org/10.1093/cid/civ872

60. Inchauste L, Patzi M, Halvorsen K, Solano S, Montesano R, Iñiguez V. Impact of rotavirus vaccination on child mortality, morbidity, and rotavirus-related hospitalizations in Bolivia. Int J Infect Dis. 2017;61:79–88. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2017.06.006

61. Burnett E, Jonesteller CL, Tate JE, Yen C, Parashar UD. Global impact of rotavirus vaccination on childhood hospitalizations and mortality from diarrhea. J Infect Dis. 2017;215(11):1666–72. https://doi.org/10.1093/infdis/jix186

62. Abou-Nader AJ, Sauer MA, Steele AD, Tate JE, Atherly D, Parashar UD, et al. Global rotavirus vaccine introductions and coverage: 2006–2016. Hum Vaccin Immunother. 2018;14(9):2281–96. https://doi.org/10.1080/21645515.2018.1470725

63. Patel M, Shane AL, Parashar UD, Jiang B, Gentsch JR, Glass RI. Oral rotavirus vaccines: how well will they work where they are needed most? J Infect Dis. 2009;200(Suppl. 1):S39–48. https://doi.org/10.1086/605035

64. Atherly DE, Lewis KDC, Tate J, Parashar UD, Rheingans RD. Projected health and economic impact of rotavirus vaccination in GAVI-eligible countries: 2011–2030. Vaccine. 2012;30(Suppl. 1):A7–14. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.12.096

65. Mwenda JM, Parashar UD, Cohen AL, Tate JE. Impact of rotavirus vaccines in Sub-Saharan African countries. Vaccine. 2018;36(47):7119–23. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2018.06.026

66. Madhi SA, Cunliffe NA, Steele D, Witte D, Kirsten M, Louw C, et al. Effect of human rotavirus vaccine on severe diarrhea in African infants. N Engl J Med. 2010;362(4):289–98. https://doi.org/10.1056/NEJMoa0904797

67. Armah GE, Sow SO, Breiman RF, Dallas MJ, Tapia MD, Feikin DR, et al. Efficacy of pentavalent rotavirus vaccine against severe rotavirus gastroenteritis in infants in developing countries in sub-Saharan Africa: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2010;376(9741):606–14. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(10)60889-6

68. Mwenda JM, Burke RM, Shaba K, Mihigo R, Tevi-Benissan MC, Mumba M, et al. Implementation of rotavirus surveillance and vaccine introduction – World Health Organization African Region, 2007–2016. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2017;66(43):1192–6. https://doi.org/10.15585/mmwr.mm6643a7

Опыт комплексной этиопатогенетической терапии ротавирусной инфекции у детей: эффективность инноваций | Горбунов

1. Kyu H.H., Pinho C., Wagner J.A., Brown J.C. Global and national burden of diseases and injuries among children and adolescents between 1990 and 2013. Findings from the global burden of disease 2013 study. JAMA Pediatrics. 2016; 170(3):267—287. doi: 10.1001/jamapediatrics.2015.4276

2. Anca I.A., Furtunescu F.L., Plesca D. Hospital-based surveillance to estimate the burden of rotavirus gastroenteritis in children below five years of age in Romania. Germs. 2014; 4(2):30—40. doi: 10.11599/germs.2014.1053

3. Médicaments à base d’argile dans le traitement symptomatique de la diarrhée aigüe chez l’enfant — Lettre aux professionnels de santé du 25.03.2019. https://www.ansm.sante.fr/S-informer/Informations-de-securite-Lettres-aux-professionnels-de-sante/Medicaments-a-base-d-argile-dans-le-traitement-symptomatique-de-ladiarrhee-aiguee-chez-l-enfant-Lettre-aux-professionnels-de-sante

4. Плоскирева А.А., Горелов А.В. Патогенетическая терапия острых кишечных инфекций у детей: комплексный подход. РМЖ «Медицинское обозрение». 2018; 8:79—82. [Ploskireva A.A., Gorelov A.V. Pathogenetic therapy of acute intestinal infections in children: a comprehensive approach. RMJ «Medical review»=RMZ «Meditsinskoye obozreniye». 2018; 8:79—82. (In Russ.)]

5. Kara S.S., Volkan B., Erten I. The therapeutic effect of gelatin tannate in acute diarrhea in children. Turkish J. Pediatrics. 2017; 59(5):531. doi: 10.24953/turkjped.2017.05.005

6. Бехтерева М.К., Комарова А.М., Усков А.Н., Раздьяконова И.В., Алексеева Л.А., Бессонова Т.В. Оценка эффективности желатина танната при острых инфекционных диареях у детей. Детские инфекции. 2017. 16(4):58—63. [Bekhtereva M.K., Komarova A.M., Uskov A.N., Razdyakonova I.V., Alekseyeva L.A., Bessonova T.V. Evaluation of the effectiveness of gelatin tannate in acute infectious diarrhea in children. Detskie Infektsii=Children’s Infections. 2017. 16(4):58—63. (In Russ.)] doi.org/10.22627/2072-8107-2017-16-4-58-63

7. Калугина Т.В., Константинова Ю.В., Малявина Т.Е. Клиническая оценка эффективности применения желатина танната в лечении детей первого года жизни с острой диареей. Лечащий врач. 2019. 6:16—18. [Kalugina T.V., Konstantinova Yu. V., Malyavina T.Ye. Clinical evaluation of the effectiveness of gelatin tannate in the treatment of children of the first year of life with acute diarrhea. Attending Physician= Lechaschiy Vrach. 2019. 6:16—18. (In Russ.)]

8. Ловердо Р.Г., Соловьев Ю.В., Штокалов К.Г., Сулима Н.Н. Опыт применения и оценка эффективности желатина танната в лечении острых кишечных инфекций у детей. Детские инфекции. 2019; 18(1):38—41. [Loverdo R.G., Solovyev Yu. V., Shtokalov K.G., Sulima N.N. Experience in using and evaluating the effectiveness of gelatin tannate in the treatment of acute intestinal infections in children. Detskie Infektsii=Children’s Infections. 2019; 18(1):38—41. (In Russ.)] doi.org/10.22627/2072-8107-2019-18-1-38-41

9. Мазанкова Л.Н., Корсунский А.А., Продеус А.П., Ардатская М.Д., Перловская С.Г. Совершенствование тактики биоценозсберегающей терапии при применении антибиотиков у детей с острыми кишечными инфекциями. Детские инфекции. 2017; 16(3):41—49. [Mazankova L.N., Korsunskiy A.A., Prodeus A.P., Ardatskaya M.D., Perlovskaya S.G. Improving the tactics of biocenosis-saving therapy when using antibiotics in children with acute intestinal infections. Detskie Infektsii=Children’s Infections. 2017; 16(3):41—49. (In Russ.)] doi.org/10.22627/2072-8107-2017-16-3-41-49

Профилактика ротавирусной инфекции – БСМП Гродно

Ротавирусная инфекция- это острое кишечное заболевание, широко распространенное в мире.

Возбудитель заболевания – ротавирус – получил свое название от латинского rota – колесо, так как вирусные частицы под электронным микроскопом выглядят как маленькие колесики с толстой втулкой, короткими спицами и тонким ободом.

По антигенным свойствам ротавирусы подразделяются на 9 серологических типов, из которых у человека встречаются типы 1-4 и 8-9, типы 5-7 выделяются от животных. Ротавирусы животных (собаки, кошки, лошади, кролики, мыши, телята, птицы) для человека непатогенны.

Ротавирусная инфекция регистрируется в течение года, но в осенний период с началом похолодания заболеваемость возрастает, достигая максимальных цифр в  зимнее время. Это связано с лучшей выживаемостью ротавируса в окружающей среде при низких температурах.

Наиболее восприимчивы к ротавирусной инфекции дети в возрасте от 6 месяцев до 3-4 лет. В более раннем возрасте от инфекции детей защищают антитела, полученные от матери, а также с грудным молоком. Если у грудничков и возникает ротавирусная инфекция, то протекать она у них будет легче.

Источником инфекции является только человек – больной или вирусоноситель. Ротавирус выделяется из организма больного на протяжении 7-8 дней от начала болезни, но иногда и более продолжительное время.

Заражение ротавирусной инфекцией происходит, как при любой кишечной инфекции – через предметы обихода, предметы ухода за детьми, пищевые продукты (чаще немытые овощи, зелень, фрукты), а также через инфицированную воду.

Инкубационный период длится от 12-15 часов до 7 дней (чаще 1-2 дня). Заболевание начинается остро. У большинства больных температура тела достигает 37,9°С и выше. При легких формах болезни как у взрослых, так и у детей выраженной лихорадки не бывает. Больные отмечают боли в эпигастральной области, тошноту, рвоту. Характерен обильный жидкий водянистый стул без примеси слизи и крови.

Как предупредить болезнь?

Профилактика острых кишечных инфекций – это дело не только медицинских работников, многое зависит и от поведения каждого из нас. Предохранить себя от заражения Вам поможет ежедневное соблюдение простых санитарно-гигиенических правил:

  • ротавирус быстро погибает при кипячении, поэтому для питья необходимо использовать кипяченую или бутилированную воду.
  • тщательно мойте овощи, фрукты, в том числе мандарины, апельсины, бананы;
  • при приготовлении пищи используйте отдельные разделочные доски и ножи для сырых и готовых продуктов;
  • храните раздельно сырые и готовые продукты питания;
  • соблюдайте сроки хранения пищевых продуктов;
  • храните скоропортящиеся продукты только в холодильнике;
  • соблюдайте правила личной гигиены, обязательно мойте руки перед началом приготовления пищи, перед едой, после посещения туалета, после общения с животными и т.д.
  • поддерживайте чистоту в доме.
  • с раннего возраста прививайте детям гигиенические навыки.
  • содержите в чистоте помещения кухни, детской, предметов ухода за ребёнком.

При появлении в семье больного ротавирусной инфекцией необходимо, по возможности, изолировать больного, выделить ему отдельную посуду, полотенце, чаще проводить влажную уборку с применением моющих и дезинфицирующих средств по вирулицидному режиму.

Государственное учреждение

«Гродненский зональный центр гигиены и эпидемиологии»

2018 год

Ротавирусная инфекция | Прививки.уз – Предупредить. Защитить. Привить.

Новые инфо материалы по иммунизации во время пандемии COVID-19

для медицинский работников и родителей

Вакцинация во время пандемии COVID-19

Вопросы и ответы для РОДИТЕЛЕЙ

Вакцинация во время пандемии COVID-19

Вопросы и ответы для МЕДРАБОТНИКОВ

В ВОЗ отмечают 40-летие победы над оспой

и призывают проявить такую же солидарность в борьбе с COVID-19

Может ли БЦЖ вакцина помочь в борьбе с коронавирусом?

Международные исследования анализируют влияние БЦЖ вакцины на коронавирус

Совместное заявление ВОЗ и ЮНИСЕФ

Во время пандемии COVID-19 крайне важно сохранить услуги плановой иммунизации

В условиях пандемии COVID-19 вакцинацию необходимо продолжать, чтобы она сохраняла свою эффективность

Европейская неделя иммунизации – 2020

ГАВИ, ВОЗ, ЮНИСЕФ: успешное сотрудничество и новые планы

22-23 ноября 2019 года в конференц-зале гостиницы Hyatt Regency Tashkent при поддержке ВОЗ Министерство здравоохранения провело ежегодную национальную конференцию по иммунизации

Первый этап вакцинации против ВПЧ прошел успешно и эффективно

Минздрав провел конференцию по итогам первого этапа прививочной кампании против ВПЧ в Узбекистане.

Первые результаты вакцинации от ВПЧ!

Как вы знаете, с 21 октября 2019 года по всей республике проводится вакцинация против ВПЧ.

В Узбекистане дан старт вакцинации против вируса папилломы человека

В столице состоялась пресс-конференция, посвященная началу вакцинации против вируса папилломы человека.

Встреча с блогерами о ВПЧ

«Мероприятие полностью меня поглотило».

Профилактика рака шейки матки и внедрение ВПЧ вакцины в Узбекистане

Все о вакцинации от ВПЧ

Встреча с Ассоциацией частных школ Узбекистана по внедрению ВПЧ вакцины

Научно-практическая конференция по профилактике, раннему выявлению и лечению рака шейки матки.

20 августа 2019 года В Ташкенте под слоганом «Будущее без рака шейки матки» прошла научно-практическая конференция по профилактике, раннему выявлению и лечению рака шейки матки.

Техническая поддержка Узбекистану в оценке температурных рисков в системе холодовой цепи для вакцин

В рамках оказания технической поддержки Узбекистану в достижении лучших стандартов качества и безопасности вакцин, с 13 по 24 августа 2019 года проходит миссия в составе консультантов ВОЗ г-жи Claire Frijs-Madsen и г-жи Erida Nelaj.

Рабочий визит делегации Республики Узбекистан по опыту внедрения внедрения вакцинации против ВПЧ в Молдове

«Это наши мамы, наши сестры, наши дочери, которых мы можем защитить от рака шейки матки уже сегодня благодаря вакцине от ВПЧ и программе скрининга», – неоднократно повторяли представители Молдовы.

Прививки: абсолютно исчерпывающая инструкция для взрослых и детей Даже для тех, кто не верит в вакцинацию

Антипрививочное движение продолжает шириться, а вместе с ним растети частота вспышек инфекций

Совсем недавно в рамках Европейской недели иммунизации состоялась очень необычная и интересная встреча

Ротавирусные инфекции у детей, вакцинированных против ротавируса в Пуне, Западная Индия

Ротавирусные инфекции в Дети вакцинированы против ротавируса в Пуне, Западная Индия

 

Прити Джайн, Гопалкришна Варанаси, Рохан Гуге, * Виджай Калрао,

# Рам Донгаде, $ Ашиш Бавдекар, Санджай Мехендейл и Шобха Читамбар

От группы кишечных вирусов, Национальный институт Вирусология, Пуна; * Медицинский колледж и больница Бхарати Видьяпит, Пуна; # Медицинский фонд и исследовательские центры Сант Днянешвар Клиника Шайшав, Пуна; $ Мемориальный госпиталь короля Эдуарда, Пуна; и Национальный институт эпидемиологии, Ченнаи; Индия.

Корреспонденция: доктор Шобха Д. Читамбар, Enteric Viruses Group, Национальный институт вирусологии, 20-A, Ambedkar Road, PO Box No 11, Пуна 411 001, Индия.
Электронная почта: [email protected]




Цель: Охарактеризовать ротавирусные инфекции, выявленные в вакцинированных против ротавирусной инфекции детей, госпитализированных по поводу острого гастроэнтерита.

Дизайн: Наблюдательное исследование в больнице.

Место действия: три больницы в Пуне, Западная Индия.

Участники: Дети в возрасте до 5 лет, госпитализированные острого гастроэнтерита в 2013-2014 гг.

Методы: ELISA с захватом ротавируса проводили на все образцы стула, взятые у пациентов после согласие от родителей. Гены VP7 и VP4 штаммов ротавируса были генотипировали с помощью мультиплексной ОТ-ПЦР. Образцы стула вакцинированных детей были проверены на другие энтеровирусы.

Результаты: Среди 529 детей 53 были привиты хотя бы одной дозой ротавирусной вакцины. Не было разница в среднем (SD) (мес) возрасте вакцинированных [14,8 (10,6)] и непривитых [14,4 (10,5)] детей. Положительный результат на ротавирус был значительно выше (47%) у непривитых, чем у привитых (28,3%) дети ( P =0,01). Средняя оценка по шкале Весикари и тяжелые случаи были значительно чаще у ротавирус-положительных детей, чем у отрицательных детей в невакцинированной группе ( P <0.001), а они не отличались в группе привитых. Штамм ротавируса G1P[8] был идентифицирован как наиболее распространенный штамм как у вакцинированных (60%), так и у непривитых (72,8%) групп. Связи между средней оценкой по шкале Весикари и вирусные коинфекции.

Выводы. Это исследование предполагает снижение выявление ротавирусной инфекции у детей, вакцинированных против ротавирусной инфекции, госпитализированных по поводу острый гастроэнтерит и высокая распространенность G1P[8] и неротавирусных коинфекции в Пуне, Западная Индия.

Ключевые слова: Эпидемиология, Диарея, Ротавирусная вакцина .


Ротавирусы продолжают оставаться самой распространенной причиной острый гастроэнтерит у детей, повлекший примерно 24 млн. амбулаторных посещений, 2,5 миллиона госпитализаций и 450 000 смертей среди детей в возрасте до 5 лет во всем мире [1]. Два ротавируса вакцины, Rotarix, моновалентная ротавирусная вакцина человека и RotaTeq, Пентавалентная реассортантная вакцина крупного рогатого скота и человека была лицензирована для использования. в ряде стран, включая Индию [2, 3].С доказательствами их высокой эффективность и безопасность в Северной и Южной Америке, Европе, Австралии, а также в странах с доходом, Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) рекомендовала их включение в программы первичной иммунизации во всем мире [4,5]. Несмотря на то что исследования по оценке иммуногенности и безопасности Rotarix и RotaTeq успешно проводятся в Индии [6, 7], они еще не введен в национальную программу иммунизации [8]. Однако их использование был рекомендован Комитетом по иммунизации детей Индийская академия педиатрии [9].В репрезентативном опросе обычно вакцинация против ротавирусной инфекции составляет 9,7%. выборке педиатров Индии в 2009-2010 гг. [10].

Во время стационарного эпиднадзора за ротавирусной инфекцией проводится в Национальном институте вирусологии, Пуна, Западная Индия среди детей, госпитализированных с острым гастроэнтеритом в 2013-2014 годы мы сравнили демографические и клинические особенности, тяжесть заболевания и вирусологический статус детей, предоставили историю вакцинации против ротавируса и другие, кто этого не сделал.

Методы

Критерии включения детей с острым гастроэнтерит и методология, используемая для клинической оценки и отбора проб коллекция была описана ранее [11]. Соответственно, дети в возрасте в возрасте до 5 лет госпитализированы по поводу острого гастроэнтерита в трех случаях. в исследовании приняли участие различные больницы в Пуне, Индия. Демографические и клинические данные, включая возраст, дату начала заболевания и выборку сбор, продолжительность и максимальное количество эпизодов диареи и рвота, признаки обезвоживания, лечение и исход инфекции зарегистрированы для всех пациентов.Тяжесть диареи оценивали на основании по шкале Весикари [12]. Кроме того, история получения ротавируса вакцина была получена от детей, включенных в исследование. Усилия были для получения точной истории вакцинации против ротавируса, обратившись к свои записи о прививках и телефонные звонки, чтобы отметить количество дозы, даты введения и тип ротавирусной вакцины. Табурет образцы собирали в стерильные пластиковые контейнеры с завинчивающимися крышками и доставлен на льду в лабораторию Национального института вирусологии, Пуне для обнаружения ротавирусного антигена и характеристики штамма.Перед включением ребенка в исследование было получено информированное согласие. полученный от родителя(ей) или опекуна. Исследование было одобрено институциональные и больничные комитеты по этике.

Десятипроцентная (масса/объем или объем/объем) суспензия была приготовлена ​​в 0,01 М фосфатно-солевой буфер (PBS) pH 7,2 из всех образцов стула. ИФА выполняли для всех суспензий с использованием имеющегося в продаже набора. (Премьер

Ротаклон, Меридиан Bioscience, Inc. США) в соответствии с инструкциями производителя для обнаружения наличие ротавирусного антигена.Вирусные нуклеиновые кислоты были выделены из 30% (масса/объем) суспензий всех образцов кала, положительных по ИФА, с использованием Тризол (Invitrogen, Carlsbad, CA) согласно производителям инструкции. Гены VP7 и VP4 были генотипированы мультиплексным обратным транскрипционная полимеразная цепная реакция (ОТ-ПЦР) по методы, описанные ранее [13-15]. Для определения VP7 и VP4 генотипы штаммов ротавирусов, нетипируемых в мультиплексной ПЦР, сначала круглые продукты ПЦР секвенировали с помощью ABI-PRISM Big Dye Terminator. Набор для секвенирования циклов (Applied Biosystems, Фостер-сити, Калифорния) и Генетический анализатор АБИ-ПРИЗМ  310 (Applied Biosystems) после очистки на миниколонках (QIAquick: Qiagen, Valencia, CA).

Наличие норовируса (NoV), кишечного аденовируса (AdV), человеческий астровирус (HAst V) и энтеровирус (EV) был обнаружен в образцы кала, взятые только у детей, привитых от ротавирусной инфекции, амплификация RdRp региона А (126 п.н.), гексона (300 п.н.) ORF 1a (289 п.н.) и  5NCR (404 п.н.), соответственно, как описано ранее [16-19].

Статистический анализ: две доли были сравнивались с использованием теста хи-квадрат, два средних сравнивались с использованием Критерий Манна-Уитни и тяжесть заболевания сравнивали с помощью хи-квадрат. тест для таблицы непредвиденных обстоятельств 4X2. P <0,05 считались статистически значимый.

Результаты

Пятьсот двадцать девять пациентов госпитализированы острого гастроэнтерита (с января 2013 г. по декабрь 2014 г.) в трех больницах в Пуне было 53 ребенка (10%), получивших ротавирусную инфекцию. вакцины и 476 (90%), не привитых. Среди привитых детей 18,9%, 56,6% и 24,5% получали 3, 2 и 1 дозу соответственно. одной из моновалентных (Rotarix) или пентавалентных (RotaTeq) вакцин.Соотношение мужчин и женщин (1,65:1 против 1,64:1) и их возраст распределения (0-6, 7-12, 13-18, 19-24, 25-59 месяцев) были одинаковыми в обе группы. Средний (SD) возраст в месяцах вакцинированных [14,8 (10,6)] и невакцинированных [14,4 (10,5)] детей, госпитализированных с острой гастроэнтерит был сопоставим.

Ротавирусная позитивность оказалась значительно низкий (28,3%) у реципиентов ротавирусной вакцины по сравнению с у нереципиентов (47%) ( P =0,01) и выше у мужчин по сравнению с самкам в обеих группах ( P <0.05). Средний (SD) возраст (мес.) в ротавирус-позитивных детей в привитых и непривитых группах было сопоставимы [14,9 (9,2) и 13,5 (7,8)] ( P >0,05). Те же два группы детей с положительной реакцией на ротавирус также показали сходные клинические профиль и представление с точки зрения лихорадки, рвоты в анамнезе и диарея, продолжительность пребывания в больнице и шкала Весикари ( P >0,05) ( Таблица I ).

  ТАБЛИЦА I  Характеристики вакцинированных и невакцинированных детей с ротавирусным гастроэнтеритом и без него
 
Переменные Вакцинированная группа Невакцинированная группа
Положительный Отрицательный P-значение Положительный Отрицательный P-значение
Номер 15 38 224 252
Мужской пол; п (%) 9 (60) 24 (63.2) 0,83 140 (62,5) 156 (61,9) 0,89
Возраст (мес), среднее значение (SD) 14,9 (9,5) 14,7 (11,1) 0,79 13,5 (7,8) 15,2 (12,4) 0,62
Лихорадка (≥37,1 0 C), среднее (СД) 38,2 (0,3) 38,1 (0,6) 0,67 38,1 (0,6) 38,3 (0,7) 0,06
Рвота
Присутствует: № (%) 14 (93,3) 20 (52,6) 0,005 205 (91,5) 179 (71) <0,001
Продолжительность (д), среднее значение (SD) 1 ,79 (1,1) 1,65 (1,2) 0,6 1,97 (1,0) 2,16 (1,3) 0,30
Эпизодов/день, среднее значение (SD) 6.64 (5,0) 4,7 (2,8) 0,3 5,24 (3,6) 4,13 (2,7) 0,001
Диарея
Продолжительность (д), среднее значение (SD) 2,33 (1,0) 2,26 (1,2) 0,64 2,19 (1,1) 2,38 (1,1) 0,13
Эпизодов/день, среднее значение (SD) 13,13 (4,7) 8,18 (3,7) 0.001 11,14 (5,5) 9,22 (5,2) <0,001
Пребывание в больнице (д), среднее (SD) 3,6 (1,1) 4,4 (1,6) 0,19 4,07 (1,1) 4,63 (2,4) 0,001
Оценка Весикари, среднее значение (SD) 11,9 (2,4) 10,5 (3) 0,11 12,3 (2,0) 11,4 (2,7) <0.001
Тяжесть заболевания, № (%)
Мягкий 0 1 (2,6) 1 (0,4) 3 (1,2)
Умеренный 3 (20) 18 (44,7) 0,129 35 (15,6) 89 (35,3) <0,001*
Тяжелый 12 (80) 17 (44,7) 186 (83) 145 (57.5)
Очень тяжелый 0 2 (5,3) 2 (0,9) 15 (6,0)

В группе детей, не получавших ротавирусная вакцина, среднее количество эпизодов рвоты и диареи в день и средние баллы по шкале Sikari чаще наблюдались среди ротавирусных положительны, чем у ротавирусотрицательных детей ( P =0,001, P <0,001 и P <0,001 соответственно), а продолжительность пребывания в стационаре составила дольше у ротавирус-отрицательных детей, чем у ротавирус-положительных дети ( P =0.001). Такой анализ проводят в вакцинированных группе детей было больше случаев рвоты и больше эпизодов диареи у детей с положительной реакцией на ротавирус, чем у детей с отрицательной реакцией (таблица I ).).

Мультиплексная ПЦР, выполненная на ротавирус-позитивных образцы стула показали амплификацию генов VP7 и VP4 у 93,3% и 100% штаммов соответственно от вакцинированной группы и в 98,8% и 98,3% соответственно от непривитой группы. Среди вакцинированных и В невакцинированных группах детей наиболее распространенными типами G и P были Г1 (73.3% и 75%) и P[8] (73,3% и 81,1%) соответственно. Другой генотипы G2, G9, G12, P[4], P[6] и P[11] были обнаружены на низких уровнях (0 % -13,3%) ( рис. . 1 а, 1 б ). Среди штаммов, типированных по обоим генам, штаммы G1P[8] были обнаружены на самый высокий уровень у обоих (60% у вакцинированных и 72,85 у непривитых) группы. Частота обнаружения других распространенных или необычных штаммов, включены G2P[4], G1P[6], G12P[8], G9P[8], G9P[4], G9P[6] и G12P[11] колебался между 0.0 % и 7,8 % ( Рис. 1 c ). В общем и целом смешанные инфекции генотипов G и P (G1G9P[4], G1P[6]P[8], G1G9P[8], G1G9P[4] P[8], G1G2P[8], G2P[4]P[8] и G9P[6]P[8]) были обнаружены в 2,7%-13,3% детей в обеих группах. Только 0,5% штаммов из невакцинированная группа оставалась нетипируемой по обоим генам.

Рис. 1 Распределение (a) генотипов G (b) генотипы P и (c) распространенные и необычные комбинации GP в Штаммы РВА выявлены у вакцинированных и невакцинированных детей.Значения в скобках указывают соответственно количество дети в привитых и непривитых группах положительны на конкретная комбинация генотипа/G-P. Сокращения – микс и нт обозначают смешанные инфекции и нетипируемые инфекции соответственно.

Gmix — это G1/G2/G9, а Pmix — это П[4]/П[6]/П[8].

Образцы кала как от ротавирус-позитивных, так и от отрицательных детей из привитой группы обследовали на инфекции с другими кишечными вирусами (NoV, AdV, HAstV и EV), которые, как известно, вызывают острые гастроэнтерит.Из 53 детей у 24 (45,2%) выявлено выделение один или несколько вирусов в стуле. Единичные инфекции NoV, AdV, AstV и EV были обнаружены у 5,6%, 11,3%, 1,8% и 13,2% соответственно. Смешанные инфекции ротавируса и других кишечных вирусов (NoV/EV/HAstV) выявлены у шести детей (11,3%). Кроме того, смешанные инфекции, также были обнаружены по одному ЭВ с HAstV и AdV с HAstV.

Обсуждение

В настоящем исследовании сообщается о характеристиках ротавирусные инфекции у вакцинированных и невакцинированных детей, <5 лет, госпитализирован по поводу острого гастроэнтерита в Пуне, Западная Индия в 2013-2014 гг.Данные этого исследования показали, что хотя уровень ротавирусной вакцинации среди зачисленных детей был всего 10%, реципиенты с меньшей вероятностью ротавирус-ассоциированный гастроэнтерит по сравнению с нереципиентами. Кроме того, аналогичные показатели тяжести заболевания и продолжительности пребывания в больнице были зарегистрированы у ротавирус положительных и отрицательных детей в вакцинированная группа. В невакцинированной группе значительно тяжелее оценка была обнаружена у ротавируса положительной по сравнению с ротавирусом негативные дети.В этой (невакцинированной) группе пребывание в стационаре отмечено при ротавирусной негативности по сравнению с ротавирус положительных детей.

Большинство ротавирусных детей из невакцинированная группа настоящего исследования была моложе 2 лет, и инфекции были сгруппированы в сезон дождей, как задокументировано. ранее [20]. Сообщалось, что сдвиги в среднем возрасте и сезонность ротавирусной инфекции может иметь место после период вакцинации [21].В настоящем исследовании картина не изменилась ротавирусных инфекций в зависимости от возраста и времени года (данные не показано) был отмечен в вакцинированной группе. Хотя этот вывод может может быть связано с неполной дозировкой и/или неправильным графиком приема. вакцинации, интерпретация имеет ограничения из-за наличия небольших количество детей в вакцинированной группе.

В более ранних сообщениях из других стран описывалось увеличение циркуляции штаммов, отличных от вакцинных, после введение моно- или пентавалентных вакцин [22].Вирусологический анализ стула с положительным результатом на ротавирус, выполненный в этом исследовании для обоих вакцинированные и невакцинированные группы соответствовали данным сообщения о разнообразии циркулирующих штаммов ротавируса [23] и выделено преобладание штаммов G1P [8] среди обеих групп. Это может быть отмечено, что циркуляция различных штаммов ротавируса одного генотипа постоянно сообщалось о детях с острым гастроэнтеритом из Пуны и других регионов Индии [24,25]. На этом фоне, инфекции штаммами G1P [8] должны быть определены путем анализа всех капсидные и внутренние гены.Далее, для определения индуцированной вакциной давление на генотипы, необходимо было бы иметь больший охват вакцинация.

Доказательства полевой эффективности ротавируса вакцина(ы) весьма желательна для усиления ее возможного распространения в масштабах всей страны. принятие и использование в новых целевых группах населения. Тем не менее, текущий отсутствие этой вакцины в национальной программе иммунизации и его доступность по сравнительно высокой цене на открытом рынке в Индии ограничить его использование, как описано ранее [10].Хотя, исследование результаты свидетельствуют о меньшей вероятности ротавирусной инфекции в вакцинированных детей, следует отметить, что в этом исследовании степень охват вакцинацией был непостоянным и что анализ был ограничен небольшое количество реципиентов вакцины, которые представляли городские педиатрическое население Западной Индии дает нам меньше, чем нужно мощность для обнаружения значимой разницы в ротавирусной инфекции приобретение между группами реципиентов и нереципиентов вакцины (78%).Тем не менее, выводы указывают на многообещающую роль ротавируса. вакцина. В связи с этим наблюдения, сделанные в данном исследовании, необходимо установлено при исследовании большого количества ротавирусной вакцины получатели и не получатели и в конечном итоге выполнение классического исследование случай-контроль для более объективного доказательства эффективности ротавируса вакцина у индийских детей. С ротавирусной вакциной, вероятно, поэтапно внедрялись в разных штатах Индии, потребуются систематические усилия для мониторинга ротавирусных инфекций и генотипы у детей с ротавирусной вакциной и тщательно задокументировать историю ротавирусной вакцины, чтобы получить данные о его эффективность в различных регионах страны.

Авторы: PJ: Проведены лабораторные испытания, интерпретировал и проанализировал данные и составил рукопись; ГВ: Скоординированный и организованный сбор клинических данных и лабораторных работай; РГ: зарегистрированные демографические и клинические данные; ВК, РД и АБ: Проведено клиническое обследование больных, поступивших в стационары; СМ: Координировал и контролировал деятельность по наблюдению в центре Пуны. и способствовал развитию рукописи; SC: Придумано и спроектировано исследование и пересмотрел рукопись для важного интеллектуального содержания.Окончательная версия рукописи была одобрена всеми авторами.

Финансирование: Индийский медицинский совет Исследования

Конкурирующие интересы: Не указано.

Благодарности: Д-р Д.Т. Мурья, директор, NIV, Пуне за постоянную поддержку и г-ну Атулу Валимбе за его помощь в статистическом анализе данных. Техническая помощь Мы выражаем благодарность г-же Канак Бораваке и г-ну Вишалу Джагтапу.


Что уже известно?

Ротавирусные вакцины оказались иммуногенен с хорошим профилем безопасности в исследованиях, проведенных в Индия.

Что добавляет это исследование?

Ротавирусная позитивность значительно ниже у вакцинированных детей, госпитализированных с диареей, по сравнению с непривитыми дети.

Каталожные номера

1.Тейт Дж. Э., Бертон А. Х., Боски-Пинто С., Стил А. Д., Дуке Дж., Парашар УД. Оценка 2008 г. во всем мире, связанная с ротавирусом смертность детей в возрасте до 5 лет до введения универсальные программы вакцинации против ротавирусной инфекции: систематический обзор и метаанализ. Ланцет Infect Dis. 2012;12:136-41.

2. Руис-Паласиос ГМ, През-Шаэль И., Вельскес Ф.Р., Abate H, Breuer T, Clemens SC, и др. . Безопасность и эффективность аттенуированная вакцина против тяжелого ротавирусного гастроэнтерита.Н англ J Мед. 2006; 354:11-22.

3. Весикари Т., Мэтсон Д.О., Деннехи П., Ван Дамм П., Сантошам М., Родригес З., и др. . Безопасность и эффективность пятивалентная реассортантная ротавирусная вакцина человека и крупного рогатого скота (WC3). Н англ J Мед. 2006; 354:23-33.

4. Комитет Американской академии педиатрии по Инфекционные заболевания. Профилактика ротавирусной инфекции: обновленные рекомендации для применения ротавирусной вакцины. Педиатрия. 2009 г.; 123:1412-20.

5. Ротавирусные вакцины Документ с изложением позиции ВОЗ: январь 2013 – Рекомендации.вакцина. 2013;31:6170-1.

6. Наранг А., Бозе А., Пандит А.Н., Датта П., Канг Г., Бхаттачарья С.К., и др. . Иммуногенность, реактогенность и безопасность ротавирусной вакцины человека (RIX4414) у индийских младенцев. Гум Вакцина. 2009;5:414-19.

7. Локешвар М.Р., Бхаве С., Гупта А., Гоял В.К., Валия А. Иммуногенность и безопасность пятивалентной вакцины человек-бычий (WC3) Реассортантная ротавирусная вакцина (PRV) у индийских младенцев. Гум Вакцина Иммунотер. 2013;9:172-6.

8. Вашиштха В.М., Чоудхури П., Калра А., Бозе А., Такер Н., Ювале В.Н., и др. .Индийская академия педиатрии (IAP) рекомендованный график прививок для детей в возрасте от 0 до 18 лет лет Индии, 2014 и обновления по иммунизации. Индийский педиатр. 2014; 51: 785-800.

9. Индийская академия педиатрии Комитет по Иммунизация (IAPCOI). Согласованные рекомендации по иммунизации, 2008 г. Индийский педиатр. 2008;45:635-48.

10. Гаргано Л.М., Такер Н., Чоудхури П., Вайс П.С., Пазол К., Бахл С., и др. . Предикторы администрации и отношение к пневмококку, гемофильной палочке типа b и ротавирусные вакцины среди педиатров в Индии: национальный опрос.вакцина. 2012 г.; 30:3541-5.

11. Канг Г., Арора Р., Читамбар С.Д., Дешпанде Дж., Гупте MD, Кулкарни М., и др. . Многоцентровое стационарное наблюдение ротавирусной болезни и штаммов среди индийских детей в возрасте < 5 лет. Дж Заразить Дис. 2009 г.; 200:S147-S53.

12. Рууска Т., Весикари Т. Проспективное исследование острая диарея у финских детей от рождения до 2,5 лет. Acta Pediatr Scand. 1991;80:500-7.

13. Татте В.С., Генч Дж.Р., Читамбар С.Д.Характеристика ротавирусной инфекции группы А у подростков и взрослые из Пуны, Индия: 1993–1996 и 2004–2007 годы. J Med Virol. 2010 г.; 82:519-27.

14. Фриман М.М., Керин Т., Дженнифер Х., Каустленд К.М., Gentsch J. Улучшение обнаружения и количественного определения ротавируса в стула с использованием модифицированного анализа ОТ-ПЦР в реальном времени. J Med Virol. 2008;80:1489-96.

15. Генч Дж. Р., Гласс Р. И., Вудс П., Гувеа В., Горзилья М., Флорес Дж., и др. . Идентификация ротавируса группы А ген 4 типа методом полимеразной цепной реакции.Дж. Клин Микробиол. 1992 год; 30:1365-73.

16. Гириш Р., Брур С., Дар Л., Гош Д. Пищевые отравления вспышка, вызванная Норуолк-подобным вирусом в Индии. J Med Virol. 2002;67:603-7.

17. Allard A, Girones R, Juto P, Wadell G. Полимераза цепная реакция для обнаружения аденовирусов в образцах стула. Джей Клин микробиол. 1990; 28:2659-67.

18. Ноэль Дж.С., Ли Т.В., Курц Дж.Б., Гласс Р.И., Монро С.С. Типирование астровирусов человека из клинических изолятов с помощью фермента иммуноанализ и секвенирование нуклеотидов.Дж. Клин Микробиол. 1995; 33:797-801.

19. Сапкал Г.Н., Бондре В.П., Фулмали П.В., Патил П., Гопалкришна В., Дадхания В., и др. . Энтеровирусы у больных острый энцефалит, Уттар-Прадеш, Индия. Эмердж Инфекция Дис. 2009;15:295-8.

20. Салуджа Т., Шарма С.Д., Гупта М., Кунду Р., Кар С., Датта А, и др. . Многоцентровая перспективная больничная база эпиднадзор для оценки бремени ротавирусного гастроэнтерита в детей в возрасте до пяти лет в Индии.вакцина. 2014;32:А13-9.

21. Патель М.М., Стил Д., Генч Дж.Р., Векер Дж., Гласс РИ, Парашар УД. Реальные последствия ротавирусной вакцинации. педиатр Infect Dis J. 2011;30:S1-S5.

22. Кирквуд К.Д., Бонифаций К., Барнс Г.Л., Бишоп РФ. Распределение генотипов ротавируса после интродукции ротавируса вакцины Rotarix и RotaTeq в Национальную программу иммунизации Австралии. Кирквуд К.Д., Бонифаций К., Барнс Г.Л., Бишоп РФ. педиатр Infect Dis J. 2011;30:S48-53.

23.Канг Г., Десаи Р., Арора Р., Читамабар С., Найк Т.Н., Кришнан Т, и др. . Разнообразие циркулирующих штаммов ротавируса в дети, госпитализированные с диареей в Индии, 2005–2009 гг. вакцина. 2013;31:2879-83.

24. Самайдар С., Гош С., Датта Д., Чавла-Саркар М., Кобаяши Н, Наик ТН. Ротавирус группы А человека P[8] Hun9-подобный и редкий OP354-подобные штаммы циркулируют среди детей с диареей в Восточной Индия. Арх Вирол. 2008; 153:1933-6.

25. Кулкарни Р., Арора Р., Арора Р., Читамбар, SD.Анализ последовательности генов VP7 и VP4 ротавирусов G1P [8] среди детей с диареей в Пуне, Индия: сравнение с Вакцинные штаммы Rotarix и RotaTeq. вакцина. 2014;32:A75-A83.



Естественное течение ротавирусной инфекции человека

‘) переменная голова = документ.getElementsByTagName(“голова”)[0] var script = document.createElement(“сценарий”) script.type = “текст/javascript” script.src = “https://buy.springer.com/assets/js/buybox-bundle-52d08dec1e.js” script.id = “ecommerce-scripts-” ​​+ метка времени head.appendChild (скрипт) var buybox = document.querySelector(“[data-id=id_”+ метка времени +”]”).parentNode ;[].slice.call(buybox.querySelectorAll(“.вариант-покупки”)).forEach(initCollapsibles) функция initCollapsibles(подписка, индекс) { var toggle = подписка.querySelector(“.цена-варианта-покупки”) подписка.classList.remove(“расширенный”) var form = подписка.querySelector(“.форма-варианта-покупки”) если (форма) { вар formAction = form.getAttribute(“действие”) документ.querySelector(“#ecommerce-scripts-” ​​+ timestamp).addEventListener(“load”, bindModal(form, formAction, timestamp, index), false) } var priceInfo = подписка.querySelector(“.Информация о цене”) var PurchaseOption = toggle.parentElement если (переключить && форма && priceInfo) { toggle.setAttribute(“роль”, “кнопка”) toggle.setAttribute(“tabindex”, “0”) переключать.addEventListener(“щелчок”, функция (событие) { var expand = toggle.getAttribute(“aria-expanded”) === “true” || ложный toggle.setAttribute(“aria-expanded”, !expanded) form.hidden = расширенный если (! расширено) { покупкаOption.classList.add(“расширенный”) } еще { покупкаOption.classList.удалить (“расширить”) } priceInfo.hidden = расширенный }, ложный) } } функция bindModal (форма, formAction, метка времени, индекс) { var weHasBrowserSupport = window.fetch && Array.from функция возврата () { var Buybox = EcommScripts ? EcommScripts.Buybox : ноль var Modal = EcommScripts ? EcommScripts.Модальный: ноль if (weHasBrowserSupport && Buybox && Modal) { var modalID = “ecomm-modal_” + метка времени + “_” + индекс var modal = новый модальный (modalID) modal.domEl.addEventListener («закрыть», закрыть) функция закрыть () { form.querySelector(“кнопка[тип=отправить]”).фокус() } вар корзинаURL = “/корзина” var cartModalURL = “/cart?messageOnly=1” форма.установить атрибут ( “действие”, formAction.replace(cartURL, cartModalURL) ) var formSubmit = Buybox.interceptFormSubmit( Buybox.fetchFormAction(окно.fetch), Buybox.triggerModalAfterAddToCartSuccess(модальный), функция () { форма.removeEventListener («отправить», formSubmit, false) форма.setAttribute( “действие”, formAction.replace(cartModalURL, cartURL) ) форма.отправить() } ) form.addEventListener (“отправить”, formSubmit, ложь) документ.body.appendChild(modal.domEl) } } } функция initKeyControls() { document.addEventListener (“нажатие клавиши”, функция (событие) { if (document.activeElement.classList.contains(“цена-варианта-покупки”) && (event.code === “Пробел” || event.code === “Enter”)) { если (document.activeElement) { мероприятие.предотвратить по умолчанию () документ.activeElement.click() } } }, ложный) } функция InitialStateOpen() { вар buyboxWidth = buybox.offsetWidth ;[].slice.call(buybox.querySelectorAll(“.опция покупки”)).forEach(функция (опция, индекс) { var toggle = option.querySelector(“.цена-варианта-покупки”) вар форма = вариант.querySelector(“.форма-варианта-покупки”) var priceInfo = option.querySelector(“.Информация о цене”) если (buyboxWidth > 480) { переключить.щелчок() } еще { если (индекс === 0) { переключить.щелчок() } еще { toggle.setAttribute («ария-расширенная», «ложь») форма.скрытый = “скрытый” priceInfo.hidden = “скрытый” } } }) } начальное состояниеОткрыть() если (window.buyboxInitialized) вернуть window.buyboxInitialized = истина initKeyControls() })()

Выявлены механизмы, лежащие в основе ротавирусных инфекций

По данным Всемирной организации здравоохранения, во всем мире ротавирусы являются основной причиной диареи у маленьких детей.По оценкам, 215 000 детей в возрасте до пяти лет ежегодно умирают от ротавирусной инфекции, которую в настоящее время можно предотвратить с помощью одной из четырех вакцин.

Ротавирусы заражают клетки тонкой кишки, называемые энтероцитами, и вирус может вызывать заболевание в других клетках, которые им не заражены. Было высказано предположение, что инфицированные клетки испускают сигналы, которые мешают функционированию неинфицированных клеток.

В отчете Science исследователи обнаружили, что эти зараженные ротавирусом клетки выделяют аденозиндифосфат (АДФ), вызывая активацию молекулы, называемой P2Y1, которая запускает межклеточные кальциевые волны в неинфицированных клетках.

Ученые использовали модель ротавирусной инфекции на мышах, чтобы показать, что тяжесть диареи можно уменьшить, нарушив связывание между АДФ и P2Y1. Это может открыть возможности для лечения инфицированных людей.

«В наших предыдущих исследованиях с использованием флуоресцентных датчиков кальция и замедленной визуализации мы обнаружили, что зараженные ротавирусом клетки отображают аберрантные сигналы кальция, которые мы можем визуализировать в виде ярких импульсов межклеточных кальциевых волн, которые исходят от инфицированных клеток», — говорится в соответствующем исследовании. автор Др.Джозеф Хайзер, доцент кафедры вирусологии и микробиологии и член Центра метагеномных и микробиомных исследований Алкека в Медицинском колледже Бейлора. «Известно, что передача сигналов кальция связана с различными аспектами ротавирусной инфекции, и наша работа выявила динамическую природу изменений, вызванных ротавирусом».

В этой работе использовалось несколько моделей, включая клеточные линии обезьян и человека. Исследователи проверили способность различных молекул вызывать кальциевые волны в клетках.Некоторые молекулы-кандидаты, такие как простагландин E2 и оксид азота, не влияли на кальций. Однако были вовлечены АДФ и АТФ, которые, как известно, играют роль в передаче сигналов кальция, но не связаны с ротавирусной инфекцией. Исследователи удалили экспрессию гена P2Y1, что предотвратило передачу сигналов АДФ и снизило внутриклеточные кальциевые волны. Было обнаружено, что инфицированные ротавирусом клетки инициируют эти волны, высвобождая АДФ, который связывается с рецепторами P2Y1 на соседних неинфицированных клетках.

«В трех модельных системах мы постоянно обнаруживали доказательства того, что зараженные ротавирусом клетки сигнализируют неинфицированным клеткам с помощью АДФ, и что это способствует тяжести заболевания», — сказала первый автор исследования доктор Александра Л. Чанг-Грэм, которая завершает исследование. Доктор медицины/доктор философии программа. «Мы считаем сменой парадигмы тот факт, что фактический сигнал, ADP, раньше даже не был на радаре».

Дополнительная работа показала, что передача сигналов АДФ также повышает тяжесть инфекции за счет увеличения экспрессии цитокина IL1-альфа, способствуя воспалению и увеличивая секрецию серотонина, ухудшая диарею.Когда передача сигналов АДФ в клетках нарушалась, межклеточные кальциевые волны уменьшались, как и высвобождение соединений.

«Наконец, мы определили, что ингибирование рецептора P2Y1 снижает тяжесть диареи, вызванной ротавирусом, на мышиной модели», — сказал Чанг-Грэм. «Используя межклеточные кальциевые волны, ротавирус усиливает свою способность вызывать заболевание за пределами клеток, которые он непосредственно заражает. Это первый идентифицированный вирус, активирующий АДФ-опосредованные межклеточные кальциевые волны. хосты.

«Наши результаты добавляют новый и очень мощный сигнальный путь к причинным механизмам ротавирусной диареи», — сказал Хайзер.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.